Nghiên cứu thực nghiệm về các thí nghiệm chống mệt mỏi và chống bức xạ của viên nang mềm với Cistanche làm nguyên liệu chính

Liên hệ: Audrey Hu Whatsapp / hp: 0086 13880143964 Email:audrey.hu@wecistanche.com

Trừu tượng:

Mục tiêu Tìm hiểu tác dụng chống mệt mỏi và chống bức xạ của viên nang mềm làm từ nguyên liệu chính là Bossica cistanche, Acanthopanax senticosus và Jujube. Phương pháp: Ba nhóm thử nghiệm đã được thành lập và chuột được cho vào dạ dày bằng viên nang mềm 0. 18, 0. 36 và 1. 0 8 g / kg · bw mỗi ngày, và một nhóm kiểm soát trống đã được thiết lập. Phép đo được thực hiện sau khi tiêm liên tục vào dạ dày trong 30 ngày. Thời gian bơi theo trọng lượng của chuột, hàm lượng glycogen trong gan, mức urê huyết thanh sau khi tập thể dục, diện tích dưới đường cong axit lactic trong máu và các chỉ số khác được sử dụng để xác định tác dụng chống mệt mỏi của chúng; những con chuột được cho các liều lượng như trên bằng thiết bị đo mỗi ngày, và một nhóm kiểm soát bức xạ được thành lập cùng một lúc. Sau khi đo khoảng cách liên tục trong 21 ngày, các liều lượng phơi nhiễm khác nhau được chọn cho các chỉ số khác nhau, và mỗi nhóm được chiếu xạ với cùng một liều lượng 7 tia một lần, và các mẫu được tiếp tục sau khi chiếu xạ. Số lượng bạch cầu trong máu ngoại vi được thực hiện trước đó, vào ngày thứ 3 và ngày thứ 14 sau khi chiếu xạ, số lượng tế bào nhân tủy xương và xét nghiệm vi nhân tế bào tủy xương được thực hiện vào ngày thứ 3 sau khi chiếu xạ, hoạt tính superoxide dismutase (SOD) trong huyết thanh được đo trên ngày thứ 7, và hoạt động của superoxide dismutase (SOD) trong huyết thanh được đo vào ngày thứ 14. Hemlysin huyết thanh để xác định tác dụng chống bức xạ của nó. Kết quả 0, 36 và 1,08g / kg · liều bw có thể kéo dài thời gian bơi có trọng lượng của chuột, 1,08; g / kg · liều bw có thể làm giảm đáng kể nồng độ urê huyết thanh của chuột sau khi tập thể dục, và làm giảm đáng kể axit lactic trong máu của chuột Diện tích dưới đường cong; số lượng bạch cầu máu ngoại vi ở nhóm liều trung bình và cao vào ngày thứ 3 và 14 sau chiếu xạ với liều 3GY cao hơn đáng kể so với nhóm đối chứng theo mô hình bức xạ; Vào ngày thứ 3, số lượng tế bào nhân tủy xương của chuột ở nhóm dùng liều cao cao hơn đáng kể so với đối chứng Ở nhóm đối chứng, tỷ lệ vi nhân của tế bào tủy xương thấp hơn đáng kể so với nhóm đối chứng. Vào ngày thứ 7 sau khi chiếu xạ với liều 6GY, hoạt tính của superoxide dismutase (SOD) trong huyết thanh của chuột ở nhóm dùng liều cao cao hơn đáng kể so với nhóm đối chứng. Sự khác biệt có ý nghĩa thống kê (P<0.05 or="" p=""><0.01). conclusion:="" the="" soft="" capsules="" with="" cistanche,="" acanthopanax="" senticosus,="" and="" jujube="" as="" the="" main="" raw="" materials="" have="" anti-fatigue="" and="" anti-radiation="">

Từ khóa: Cistanche; Acanthopanax senticosus; Táo tàu; Chống mệt mỏi; Chống bức xạ

Cistanche Desticola có nhiều tác dụng, click vào đây để biết thêm

CistancheThân cây có vảy và lá có vảy của cây Nhục thung dung, một trong những vị thuốc nam quý của Trung Quốc với rất nhiều công dụng. . Các nghiên cứu đã chỉ ra rằng nó có chức năng nâng cao chức năng miễn dịch của cơ thể, tăng cường trí nhớ, cải thiện trí tuệ, điều hòa hệ thần kinh, tăng cường chức năng tình dục, chống lão hóa, nhuận tràng và chống bức xạ. Acanthopanax senticosus, còn được gọi là Acanthopanax senticosus và Acanthopanax senticosus, là rễ và thân rễ của cây Acanthopanax senticosus thuộc họ Araliaceae. Các học giả trong và ngoài nước đã xác minh rằng nó chứa nhiều thành phần hoạt tính và có thể tăng cường khả năng phòng vệ không đặc hiệu của cơ thể thông qua các nghiên cứu và thí nghiệm sâu rộng. Khả năng, với tác dụng điều hòa miễn dịch, chống khối u, chống lão hóa, chống bức xạ và chống mệt mỏi. Táo tàu là quả trưởng thành của giống táo tàu Rhamnus. Nó được gọi là năm loại trái cây cổ đại của Trung Quốc cùng với đào, mận, kê và mơ. Các nghiên cứu đã phát hiện ra rằng nó có tác dụng kích thích miễn dịch, chống oxy hóa, chống lão hóa, chống khối u, chống đột biến, chống dị ứng loại I và chống mệt mỏi. Sản phẩm này được làm thành viên nang mềm vớiCistanche, Acanthopanax senticosus, và Jujube làm nguyên liệu chính. Chúng tôi đã tiến hành các thí nghiệm trên động vật về tác dụng chống mệt mỏi và chống bức xạ toàn diện của nó.

Cistanche

1. Chất liệu và phương pháp

1.1 Chất thử

Được cung cấp bởi một công ty, viên nang mềm, 1. 0 8g / viên, chủ yếu được làm từ Cistanche, Acanthopanax senticosus, táo tàu và các nguyên liệu thô khác qua quá trình chế biến khoa học. Liều khuyến cáo cho người uống là 0,036 g / kg · bw. Lấy nội dung của viên nang để làm thí nghiệm. Kết quả kiểm tra độc tính trong phòng thí nghiệm của chúng tôi cho thấy việc uống cấp tính viên nang mềm này đối với chuột Côn Minh đực và cái lớn hơn 21500 ms / kg · bw, và nó không độc. Ba xét nghiệm độc tính di truyền (xét nghiệm Ames, xét nghiệm vi nhân hồng cầu đa sắc trong tủy xương chuột, xét nghiệm dị dạng tinh trùng chuột) đều cho kết quả âm tính. Cho ăn trong 30 ngày không tạo ra tác dụng phụ và độc hại rõ ràng trên các chỉ số quan sát của chuột.

1.2. Động vật thí nghiệm

Có 200 con chuột cái Côn Minh sạch bệnh và 160 con chuột đực nặng 18-22 g, được cung cấp bởi Phòng Dịch vụ Kỹ thuật Động vật Phòng thí nghiệm Dongchuang, Quận Khai Phủ, Thành phố Trường Sa và số giấy phép sản xuất động vật thử nghiệm là SCXK (Xiang) {{3} }. Trong quá trình thử nghiệm, nhiệt độ môi trường thử nghiệm là 22-24 độ và độ ẩm là 52 phần trăm -58 phần trăm. Môi trường thí nghiệm là một hệ thống rào cản. Số giấy phép động vật thí nghiệm là SYXK (Xiang) ZOO3—0002.

1.3 Cài đặt liều lượng và phương pháp cho chất thử

Liều thấp, trung bình và cao là {{0}}. 18, 0. 36 và 1,08g / kg · bw (tương ứng với 5, 10 và 30 lần so với liều khuyến cáo của con người ). Lấy phần bên trong viên nang mềm và thêm dầu thực vật ăn được đến nồng độ cần thiết. Nhóm đối chứng được cung cấp một lượng dầu thực vật ăn được bằng nhau, và lượng dầu ăn được cho mỗi ngày một lần với thể tích 0,1ml / 10g · bw. Trong thí nghiệm chống mệt mỏi, chụp dạ dày liên tục trong 30 ngày, và thí nghiệm chống bức xạ trong 21 ngày sau khi mổ dạ dày liên tục bắt đầu đo các chỉ số quan sát khác nhau.

1.4 Dụng cụ chính và thuốc thử

Bộ xét nghiệm urê huyết thanh được cung cấp bởi Công ty TNHH Khoa học Y tế Fosun Long March Thượng Hải; bộ xét nghiệm axit lactic trong máu do công ty RANDOX của Anh cung cấp; bộ thử nghiệm glycogen được cung cấp bởi Viện nghiên cứu kỹ thuật sinh học Nam Kinh Jiancheng.

1.5 Phương pháp và Đo lường Chỉ số Quan sát

200 con chuột cái Côn Minh cấp độ sạch được chia thành các nhóm I, II, III, IV và V5. Lần lượt thực hiện xét nghiệm đếm tế bào bạch cầu trong máu ngoại vi, xét nghiệm đếm tế bào nhân tủy xương, xét nghiệm vi nhân tế bào tủy xương chuột và superoxide máu. Xét nghiệm hoạt độ Dismutase (sOD) và xét nghiệm hemolysin huyết thanh. Mỗi nhóm lớn thêm động vật, và mỗi nhóm lớn được chia ngẫu nhiên thành nhóm kiểm soát mô hình bức xạ, nhóm liều thấp, trung bình và cao, với 10 động vật trong mỗi nhóm. Sau 21 ngày phân chia liên tục, nhóm liều và nhóm điều khiển mô hình bức xạ được chiếu xạ với cùng một liều 7- tia toàn thân một lần, và các liều lượng khác nhau được chọn theo các chỉ số khác nhau. Sau khi chiếu xạ, việc phân chia được tiếp tục cho đến khi kết thúc mỗi thí nghiệm.

1.5.1 Thí nghiệm đếm bạch cầu trong máu ngoại vi

Cả nhóm liều và nhóm điều khiển mô hình bức xạ đều được dùng liều 3Cy cho 7 tia một lần. Máu đầu đuôi 2 0 được thu thập trước khi chiếu xạ, 3 ngày sau khi chiếu xạ và 14 ngày sau khi chiếu xạ, và được thêm vào 0,38 ml axit clohydric 1%. Sau khi trộn, tổng số lượng bạch cầu được đếm.

1.5.2 Thí nghiệm về số lượng tế bào nhân tủy xương

Cả nhóm liều và nhóm điều khiển mô hình bức xạ đều được chiếu xạ toàn bộ cơ thể bằng 7 tia với liều 3 Gy. Vào ngày thứ 3 sau khi chiếu xạ, những con chuột bị chết do trật cổ tử cung, xương đùi bị tước bỏ, và tất cả các tế bào tủy xương ở xương đùi được rửa sạch bằng dung dịch Hank. Đếm dưới gương. Tính số tế bào có nhân trong mỗi ml tế bào tủy xương.

1.5.3 Tủy xương chuột

Nhóm liều thử nghiệm vi nhân tế bào và nhóm điều khiển mô hình bức xạ đều được chiếu xạ toàn thân bằng 7 tia với liều lượng 3Gy. Đến ngày thứ 3 sau chiếu xạ, chuột được hy sinh bằng cách mổ đốt sống cổ, cắt bỏ xương ức, ép lấy dịch tủy xương trộn với huyết thanh bê, phết thường quy, cố định bằng metanol, nhuộm Giemsa, rửa bằng nước cất, sấy khô. . Dưới kính hiển vi quang học, mỗi con vật đếm số lượng vi nhân trong 1, 000 hồng cầu đa sắc.

1.5.4 Thử nghiệm hoạt tính của superoxide dismutase (SOD) trong huyết thanh

Cả nhóm liều lượng và nhóm điều khiển mô hình bức xạ đều được chiếu xạ toàn bộ cơ thể bằng 7 tia với liều lượng 6 Gy. Vào ngày thứ 7 sau khi chiếu xạ, nhãn cầu được lấy ra, lấy máu, ly tâm và lấy huyết thanh. Hoạt tính của superoxide dismutase (so /)) trong huyết thanh được xác định theo hướng dẫn của bộ kit.

1.5.5 Thử nghiệm hemolysin huyết thanh

Cả nhóm phân liều và nhóm điều khiển mô hình bức xạ đều được chiếu xạ toàn thân với liều 2Gy với 7 tia một lần. Trong vòng 2 0 ngày sau khi chiếu xạ, giá trị tán huyết một nửa trong huyết thanh (Rico) được đo. Mỗi con chuột được tạo miễn dịch bằng cách tiêm vào phúc mạc 2 phần trăm (v / v, pha với nước muối sinh lý) thể tích 0,2ml RBC. Sau 5 ngày, nhãn cầu được lấy ra và lấy máu trong ống ly tâm, ly tâm ở tốc độ 20 000 vòng / phút trong 10 phút và thu được huyết thanh. Xác định giá trị tan máu một nửa (HC50). 1.6 Thí nghiệm chống mệt mỏi 160 con chuột đực Côn Minh loại sạch được chia thành 4 nhóm I, Ⅱ, Ⅲ, iV, mỗi nhóm 40 con, và thử nghiệm bơi có trọng lượng, urê huyết thanh, axit lactic máu và glycogen gan là đo lường. . Mỗi nhóm lớn được chia ngẫu nhiên thành nhóm đối chứng, nhóm liều thấp, nhóm liều trung bình và nhóm liều cao, với 10 con trong mỗi nhóm.

1.6.1 Thử nghiệm bơi có trọng lượng

Sau khi cho chất thử 30 phút lần cuối, chuột được thả vào thùng bơi để bơi. Độ sâu của nước khoảng 30era và nhiệt độ nước là 2 ^ 5 độ ± 1. O ~ C, rễ của đuôi chuột chứa 5% trọng lượng cơ thể của da chì. Thời gian từ khi bắt đầu bơi đến khi chuột chết được ghi lại là (các) thời gian bơi có trọng lượng.

1.6.2 Xác định urê huyết thanh

Sau khi cho chất thử 30 phút lần cuối, chuột bơi không tải trong 90 phút trong nước ở nhiệt độ 30 ~ C, và sau 60 phút, nhãn cầu được rút ra để lấy máu. Sau khi để yên ở 4 ~ C trong 3 giờ, ly tâm với tốc độ 2000 vòng / phút trong 15 phút, huyết thanh được thu thập và xác định urê huyết thanh bằng máy phân tích sinh hóa hoàn toàn tự động.

1.6.3 Xác định glycogen gan

Phương pháp ngôi kể:30 phút sau khi tiêm chất thử cuối cùng cho chuột, các con vật được hiến tế, lấy 100 mg gan và gan, xác định glycogen gan theo hướng dẫn của bộ kit.

1.6.4 Xác định axit lactic trong máu

Sau 3 0 phút kể từ lần sử dụng cuối cùng của chất thử nghiệm, máu được thu thập từ đám rối tĩnh mạch thần kinh trung gian trong 20 và sau đó bơi trong nước ở nhiệt độ 30 ~ C không trọng lượng trong 10 phút, sau đó dừng lại. Máu được lấy lần lượt vào lúc 0 phút và 20 phút sau khi tập thể dục. Dưới khu vực.

1.7 Xử lý dữ liệu thử nghiệm

Sử dụng phần mềm Spss để phân tích thống kê.

2 kết quả

2.1 Ảnh hưởng của chất thử đến trọng lượng của chuột

In the anti-radiation experiment, the mice gained normal weight before irradiation, and the mice in each group decreased after irradiation. In the anti-fatigue experiment, the weight of mice in each dose group was compared with the control group during the experiment, and the difference was not statistically significant (P>0.05).

2.2 Ảnh hưởng đến số lượng bạch cầu của máu ngoại vi ở chuột

Xem Bảng 1. Số lượng bạch cầu trong nhóm đối chứng của mô hình bức xạ vào ngày thứ 3 sau khi chiếu xạ được so sánh với ngày trước khi chiếu xạ. Sự khác biệt có ý nghĩa thống kê (P<0.01), indicating="" that="" the="" radiation="" damage="" model="" was="" established.="" on="" the="" 3rd="" day="" after="" irradiation,="" the="" white="" blood="" cell="" counts="" of="" the="" medium="" and="" high="" dose="" groups="" and="" the="" medium-dose="" group="" on="" the="" 14th="" day="" were="" significantly="" higher="" than="" those="" of="" the="" radiation="" model="" control="" group,="" and="" the="" difference="" was="" statistically="" significant="" (p=""><0.05 or="" p=""><>

2.3 Ảnh hưởng đến số lượng tế bào nhân trong tủy xương của chuột và tỷ lệ vi nhân của tế bào tủy xương ở chuột

Xem Bảng 2. Vào ngày thứ 3 sau khi chiếu xạ, số lượng tế bào nhân tủy xương ở nhóm dùng liều cao cao hơn đáng kể so với nhóm đối chứng, và tỷ lệ vi nhân của tế bào tủy xương ở nhóm dùng liều cao là đáng kể. thấp hơn so với nhóm chứng. Sự khác biệt có ý nghĩa thống kê (P<0.>

2.4 Ảnh hưởng đến hoạt động của superoxide dismutase (SOD) trong huyết thanh chuột và giá trị tán huyết một nửa của chuột (HC50)

Vào ngày thứ 7 sau khi chiếu xạ, hoạt tính của superoxide dismutase (so /) trong huyết thanh của chuột ở nhóm dùng liều cao cao hơn đáng kể so với ở nhóm đối chứng, và sự khác biệt có ý nghĩa thống kê (P<0.05). on="" the="" 14th="" day="" after="" irradiation,="" the="" half="" hemolysis="" value="" (he50)="" of="" the="" mice="" in="" each="" dose="" group="" was="" compared="" with="" the="" control="" group,="" and="" the="" difference="" was="" not="" statistically="" significant="" (p="">0.05).

2.5 Ảnh hưởng của các thành phần của chất thử nghiệm đến thời gian bơi có trọng lượng, urê huyết thanh và dự trữ glycogen gan của chuột

Thời gian bơi có trọng lượng của chuột ở nhóm liều trung bình và liều cao dài hơn so với nhóm đối chứng, và sự khác biệt có ý nghĩa thống kê (P<0.05). the="" serum="" urea="" of="" mice="" in="" the="" high-dose="" group="" was="" lower="" than="" that="" in="" the="" control="" group="" (p=""><0.05). the="" liver="" glycogen="" reserves="" of="" mice="" in="" each="" dose="" group="" were="" compared="" with="" those="" in="" the="" control="" group,="" and="" the="" difference="" was="" not="" statistically="" significant="" (p="">0.05)

3 Thảo luận

Sau khi bức xạ ion hóa tác động lên cơ thể, nó có thể tác động trực tiếp lên DNA, protein, enzym, gây ion hóa và phá vỡ các liên kết hóa học, biến tính các phân tử, phá hủy cấu trúc tế bào; nó cũng có thể tác động lên các phân tử nước trong cơ thể để ion hóa và kích thích các phân tử nước, dẫn đến một lượng lớn các gốc tự do có tính oxy hóa mạnh gián tiếp gây thoái hóa và hoại tử tế bào mô, gây rối loạn chuyển hóa và gây rối loạn chức năng điều hòa của hệ miễn dịch, hệ thống thần kinh và nội tiết _4 J. Tổng số tế bào bạch cầu trong máu ngoại vi, số lượng tế bào nhân trong tủy xương, tỷ lệ vi nhân của hồng cầu đa sắc tủy xương chuột, hoạt động của superoxide dismutase (SoD) trong máu và hemolysin huyết thanh là tất cả các chỉ số nhạy cảm phản ánh tác hại của bức xạ đối với cơ thể. Kết quả của nghiên cứu này cho thấy sau khi chiếu một lượng tia 7- nhất định lên toàn bộ cơ thể chuột, tỷ lệ vi nhân của hồng cầu đa sắc tủy xương ở nhóm chuột kiểm soát mô hình bức xạ đã tăng lên đáng kể, bạch cầu ngoại vi. số lượng tế bào máu, tế bào tạo nhân tủy xương, hoạt động SOD và sự tán huyết trong huyết thanh Trong nhóm thử nghiệm, số lượng bạch cầu trong máu ngoại vi, số lượng tế bào tạo nhân tủy xương và hoạt tính superoxide dismutase (SOD) trong huyết thanh của chuột nhóm thử nghiệm là cao hơn đáng kể so với nhóm điều khiển mô hình bức xạ; tỷ lệ vi nhân tế bào tủy xương thấp hơn đáng kể so với nhóm đối chứng; nó cho thấy rằng viên nang mềm đã được thử nghiệm có tác dụng chống bức xạ tổn thương nhất định. Lần này, quan sát thấy hemolysin huyết thanh trong nhóm chất thử nghiệm có xu hướng tăng lên, nhưng không có sự khác biệt đáng kể so với nhóm kiểm soát mô hình bức xạ. Có thể mẫu thử nghiệm đã được đưa ra chưa đủ lâu. Trong nghiên cứu thử nghiệm chống mệt mỏi, thời gian bơi chịu trọng lượng của chuột nhóm thử nghiệm dài hơn đáng kể so với nhóm chụp ảnh cột, và mức urê huyết thanh và diện tích dưới đường cong axit lactic trong máu của chuột sau khi tập luyện là thấp hơn đáng kể so với nhóm chứng, chứng tỏ viên nang mềm được thử nghiệm có tác dụng chống mệt mỏi.

Viên nang mềm vớiCistanche, Acanthopanax senticosus, và chiết xuất Táo tàu là các thành phần chính có tác dụng chống bức xạ đáng kể và làm giảm mệt mỏi về thể chất. Điều này chủ yếu là do chúng chứa nhiều thành phần hoạt tính khác nhau, mỗi thành phần đóng một vai trò khác nhau. Các thành phần hoạt động chính củaCistanchelàcistancheglycoside,echinacosides, cimicifuga glycosides, cistanche polysaccharides, D-mannitol, v.v. Thực nghiệm cho thấy l1,5,6], tổng số glycoside củacistanchecó tác dụng bảo vệ mạnh mẽ chức năng của tế bào lympho T ở chuột bị thương do phóng xạ. Glycosid tăng cường chức năng của trục dưới đồi-tuyến yên-thượng thận, thúc đẩy việc giải phóng các hormone liên quan trong cơ thể, và giúp cải thiện các chức năng của cơ thể. Cistanchecistanchepolysaccharides đóng một vai trò quan trọng trong việc thúc đẩy sự phát triển của các cơ quan miễn dịch, khả năng thực bào của hệ thống thực bào, và các chức năng miễn dịch dịch thể và tế bào.Cistanche polysaccharidevà D-mannitol có tác dụng trì hoãn sự lão hóa, kích hoạt superoxide dismutase, và giảm sự tích tụ lipofuscin trong cơ thể.Cistanchecó thể điều chỉnh siêu cấu trúc của tế bào gan, thúc đẩy tổng hợp protein, và đối kháng với sự phân hủy protein do tập thể dục nặng gây ra, do đó nitơ urê huyết thanh giảm đáng kể. Các thành phần chính của Acanthopanax senticosus là glycosid, polysaccharid và oligosaccharid, các nguyên tố vi lượng và axit amin. Các nghiên cứu đã xác nhận rằng _2 J, Acanthopanaxsenticosuspolysaccharides và glycoside có thể cải thiện đáng kể khả năng cảm ứng interferon của tế bào và là những chất tăng cường miễn dịch lý tưởng. Chúng có thể thúc đẩy các chức năng của tế bào T, tế bào B, tế bào NK và đại thực bào. Nó cũng có thể thúc đẩy sản xuất interleukin, interferon, yếu tố hoại tử khối u và các cytokine khác. Cơ chế chống mệt mỏi của Acanthopanax senticosus có thể là kích thích bài tiết một số hormone, tăng cường khả năng hấp thụ oxy của cơ thể khi tập luyện và thay đổi hiệu quả cung cấp năng lượng cho cơ thể. Chuyển hóa năng lượng được thay đổi từ glycogen trong cơ thành chất béo, do đó tiết kiệm glycogen trong cơ và giúp trì hoãn hiệu quả sự mệt mỏi khi tập luyện Sản xuất _8 J. Táo tàu có chứa axit, glycoside, alkaloid, flavonoid, protein, axit amin, vitamin, v.v. Các nghiên cứu đã chỉ ra rằng polysaccharide trong táo tàu có hoạt tính chống bổ thể rõ ràng, có thể thúc đẩy sự tăng sinh của các tế bào lá lách chuột, có thể thúc đẩy phản ứng tăng sinh tự phát của các tế bào lá lách chuột và phản ứng của nuôi cấy tế bào lympho hỗn hợp, và người ta tin rằng nó có ảnh hưởng đến tế bào lá lách chuột không hoạt động. Thúc đẩy sự sinh sôi nảy nở; Các polysaccharid thô của táo tàu, polysaccharid trung tính, polysaccharid có tính axit đều thúc đẩy tăng sinh tế bào lympho, có thể cải thiện đáng kể chức năng thực bào của các tế bào khoang bụng chuột, thúc đẩy hemolysin và các mảng tan huyết, thúc đẩy chuyển đổi tế bào lympho và tăng phân hủy tế bào lympho máu ngoại vi. Polysaccharid trong táo tàu có tác dụng quét gốc tự do nên có tác dụng chống quá trình peroxy hoá lipid.

Kết quả của nghiên cứu này cho thấy quá trình chế biến khoa học của Cistanche, Acanthopanaxsenticosus, táo tàu bào thành viên nang mềm có tác dụng giải tỏa mệt mỏi, tăng cường sức đề kháng cho cơ thể, ngăn ngừa hoặc làm giảm tác hại của bức xạ đối với sức khỏe con người. Bài báo này cung cấp cơ sở khoa học cho việc nghiên cứu và phát triển các loại thực phẩm sức khỏe tự nhiên có thể làm giảm mệt mỏi về thể chất và bảo vệ khỏi tác hại của bức xạ.

Người giới thiệu :

[1] Li Qingdao, Yang Laixiu. Tiến độ nghiên cứu về tác dụng dược lý của Cistanche [J]. Y học cổ truyền Trung Quốc Nội Mông, 2001, 4:35.

[2] Wang Zhirui, Lin Jingming, Zhang Zhongyi, v.v ... Tiến độ nghiên cứu về các thành phần hóa học và dược lý học của Acanthopanax senticosus [J]. Dược liệu Trung Quốc, 2003, 26 (8): 603-605.

[3] Miao Mingsan, Sun Limin. Nghiên cứu hiện đại về táo tàu [J]. Y học cổ truyền Trung Quốc Hà Nam, 2O03, 26 (3): 59-60.

[4] Zhang Chunsheng, Peng Shanzhuo. Vai trò của chất chống oxy hóa trong việc bảo vệ bức xạ [J]. Tạp chí Y học Công nghiệp Trung Quốc, 2003, 16: 222-224.

[5] Chen Shaoshu, He Shenghu, Cao Xiaozhen, v.v. Chăn nuôi và Thú y Cam Túc, 2005, 3 (tổng số 182): 41-43.

[6] Liu Fuxiang, Xu Min, Wang Jian, v.v. Nghiên cứu dược lý và triển vọng củaCistanche[J]. Bản tin Khoa học Nông nghiệp An Huy, 2006, 12 (13): 92 ~ 93.

[7] Yang Chunhua, Liu Gang, Zhang Chongxi, v.v ... Tiến độ nghiên cứu của Acanthopanax senticosus. Nghiên cứu nhân sâm, 2004, 1: 17-20.

[8] Pan Xiang, Xu Feng. Tiến độ nghiên cứu thực nghiệm chức năng chống mệt mỏi của Acanthopanax senticosus [J]. Khoa học và Quản lý Động vật trong Phòng thí nghiệm, 2005, 22 (2): 39-41.

[9] Ministry of Health "Technical Specifications for Health Food Inspection and Evaluation>Es]. (Ấn bản 2O03)