Liên hệ: Audrey Hu Whatsapp / hp: 0086 13880143964 Email:audrey.hu@wecistanche.com

Trừu tượng:Mối quan tâm ngày càng tăng về sức khỏe tổng thể đang thúc đẩy thị trường toàn cầu về các thành phần tự nhiên không chỉ trong ngành công nghiệp thực phẩm mà còn trong lĩnh vực mỹ phẩm. Trong nghiên cứu này, một cuộc sàng lọc về các ứng dụng mỹ phẩm tiềm năng của các chất chiết xuất từ ​​nước từ ba người Icelandrong biểns được tạo ra bởi điện trường xung (PEF) đã được thực hiện. Các chiết xuất do PEF sản xuất từ ​​Ulva lactuca, Alaria esculenta vàPalmaria palmata đã được so sánh với chiết xuất bằng nước nóng truyền thống về hàm lượng polyphenol, flavonoid và carbohydrate. Hơn thế nữa,chất chống oxy hóacác đặc tính và hoạt tính ức chế enzym được đánh giá bằng cách sử dụng các xét nghiệm in vitro. PEF cho kết quả tương tự như phương pháp truyền thống, cho thấy một số ưu điểm như bản chất không sinh nhiệt và thời gian chiết xuất ngắn hơn. giá trị 12.098,7 µg QE / g dw) hợp chất, cũng cho thấy mức cao nhấtchất chống oxy hóanăng lực. Hơn nữa, chiết xuất Alaria esculenta thể hiện các hoạt động chống enzym tuyệt vời (76,9, 72,8, 93. 0 và 100% đối với collagenase, elastase,tyrosinaseandhyaluronidase, tương ứng) để sử dụng chúng trong các sản phẩm làm trắng da và chống lão hóa. Do đó, nghiên cứu sơ bộ của chúng tôi cho thấy rằng các chất chiết xuất từ ​​Alaria esculenta của Iceland do PEF sản xuất có thể được sử dụng làm thành phần tiềm năng cho các công thức mỹ phẩm tự nhiên và trang điểm.

Từ khóa:tảo vĩ mô; Ulva lactuca; Alaria esculenta; Palmaria palmata; Chiết xuất với sự hỗ trợ của PEF; các hợp chất hoạt tính sinh học; chiết xuất xanh; thành phần tự nhiên; mỹ phẩm

cistanche đang làm trắng các thành phần tự nhiên

1. Giới thiệu

Trong những năm gần đây, nhu cầu về các hợp chất hoạt tính sinh học mới có tiềm năng có lợi cho sức khỏe đã tăng lên đáng kể. Nhiều nhóm nghiên cứu đã tập trung vào nghiên cứu các sinh vật biển, chẳng hạn như tảo vĩ mô, để tìm ra các nguồn hợp chất tự nhiên mới và bền vững cho các ứng dụng trong ngành nông nghiệp thực phẩm, dược học, thực phẩm và gần đây là trong lĩnh vực mỹ phẩm [1,2] . Macroalgae là một nhóm sinh vật quang hợp lớn và không đồng nhất được đặc trưng bởi sự đa dạng sinh học khổng lồ và thành phần sinh hóa phong phú. Theo cấu trúc hóa học và hàm lượng sắc tố, tảo vĩ mô có thể được chia thành ba dòng bao gồm tảo nâu (Phaeophyceae), tảo đỏ (Rhodophyta) và tảo lục (Viridiplantae). Các hợp chất của tảo được lưu trữ trong tế bào chất của tế bào hoặc liên kết với màng tế bào; do đó, sự phá vỡ tế bào là rất quan trọng đối với việc định giá sinh khối tảo. Ngoài ra, thành phần thành tế bào rất thay đổi giữa các loài tảo, từ màng nhỏ đến cấu trúc phức tạp nhiều lớp, làm cho việc thu hồi các sản phẩm tảo là một thách thức [3]. Nói chung, rong biển là nguồn tuyệt vời của polysaccharide, protein, lipid và nhiều loại chất chuyển hóa thứ cấp khác nhau như các hợp chất phenolic, terpenoit, carotenoid, sắc tố và các dẫn xuất nitơ [4–6]. Mặc dù các chất chuyển hóa sơ cấp có tầm quan trọng thiết yếu, nhưng dữ liệu gần đây cho thấy rằng hàm lượng của các chất chuyển hóa thứ cấp quyết định các hoạt động sinh học củarong biểndịch chiết [7].

Mối quan tâm ngày càng tăng đối với sức khỏe và sức khỏe tổng thể, cũng như nhận thức về các hóa chất có hại trong các sản phẩm hàng ngày, đang thúc đẩy thị trường toàn cầu về các thành phần tự nhiên và hữu cơ [8]. Trong những năm qua, ý thức của người tiêu dùng đối với việc ưa thích các sản phẩm có thành phần tự nhiên và thân thiện với môi trường đã mở rộng từ ngành công nghiệp thực phẩm sang ngành mỹ phẩm và chăm sóc cá nhân [9]. Hơn nữa, trong bối cảnh trái đất nóng lên và các vấn đề sinh thái hiện nay, nhận thức của cộng đồng về các vấn đề môi trường ngày càng được nâng cao. Kết quả là, ngành công nghiệp mỹ phẩm hiện đang thay thế các hóa chất độc hại và các thành phần có hại bằng các hợp chất mới và tự nhiên có giá trị cao để tạo ra các sản phẩm làm đẹp "sạch về mặt hóa học" [10].

Mỹ phẩm từ trước đến nay thường được định nghĩa là sản phẩm dùng để bôi lên cơ thể con người để làm sạch, làm đẹp hoặc tăng sức hấp dẫn mà không ảnh hưởng đến các chức năng cấu trúc cơ thể. Tuy nhiên, xu hướng mới và nhu cầu của người tiêu dùng gần đây đã thúc đẩy sự phát triển của các sản phẩm mới cung cấp nhiều lợi ích với nỗ lực tối thiểu. Thuật ngữ thẩm mỹ ban đầu hiện nay thường được sử dụng để mô tả các sản phẩm mỹ phẩm có các thành phần hoạt tính sinh học tuyên bố có lợi ích y tế hoặc giống như thuốc [11]. Dược mỹ phẩm thường chứa các thành phần chức năng như vitamin, hóa chất thực vật, enzym,chất chống oxy hóavà / hoặc tinh dầu [12]. Vì một loạt các hợp chất có hoạt tính sinh học này đã được tìm thấy trong tảo vĩ mô, việc điều tra mớirong biểns và chiết xuất từ ​​tảo biển được chứng minh là một lĩnh vực đầy hứa hẹn của các nghiên cứu mỹ phẩm và mỹ phẩm [13,14].

Một số chất chuyển hóa thứ cấp có nguồn gốc từrong biểns được biết đến với các tác dụng hữu ích cho sức khỏe có giá trị trên da, chẳng hạn như bảo vệ hình ảnh, dưỡng ẩm,chất chống oxy hóa, đặc tính chống viêm và tái tạo [15]. Dựa trên những tác dụng hữu ích này, algaeare được kết hợp trong các sản phẩm thẩm mỹ như kem chống nắng, sản phẩm chống lão hóa, cũng như để ngăn ngừa tăng sắc tố, trong khi polysaccharid được sử dụng để giữ ẩm cho da và ngăn ngừa khô da [16]. Trong quá trình lão hóa, các protein nền ngoại bào dễ bị hoạt động quá mức của các enzym phân giải protein như collagenase andelastases, dẫn đến những thay đổi có thể nhìn thấy trên da, chẳng hạn như nếp nhăn hoặc mất độ đàn hồi của da. Một cách tiếp cận đầy hứa hẹn để ngăn ngừa lão hóa da bên ngoài là ức chế các hoạt động của collagenasea và elastase bởi các hợp chất tự nhiên. Các chất chiết xuất từ ​​thực vật đã được nghiên cứu rộng rãi và được phát hiện có các hoạt động chống collagenase và chống elastase [17]. Tuy nhiên, có rất ít thông tin về các hoạt động enzym ức chế của chất chiết xuất từ ​​rong biển.

Các phương pháp chiết xuất được áp dụng thường xuyên nhất để phân lập các hoạt chất sinh học từ tảo biển là dựa trên các kỹ thuật thông thường. Tuy nhiên, việc sử dụng các phương pháp truyền thống có một số hạn chế, chẳng hạn như sử dụng lượng lớn dung môi hữu cơ, thời gian chiết xuất lâu hơn, nhiệt độ cao, các vấn đề về chọn lọc, yêu cầu năng lượng cao và hệ số của các hợp chất gây nhiễu hoặc không có mục tiêu [18]. Do đó, các kỹ thuật ngoại vi mới dựa trên các nguyên tắc hóa học xanh có tiềm năng được quan tâm [19].

Điện trường xung (PEF) là một công nghệ chế biến thực phẩm mới nổi, không dùng nhiệt và tiết kiệm năng lượng [20]. PEF liên quan đến việc áp dụng các xung điện trường thường ở điện áp cao (dải kV) và khoảng thời gian ngắn (micro hoặc nano giây) vào một sản phẩm được đặt giữa hai điện cực [21]. Việc áp dụng các xung điện tạo ra các lỗ xốp thuận nghịch hoặc không thể đảo ngược định dạng trong màng tế bào, được định nghĩa là quá trình ổn định hóa chất thấm qua điện, do đó tạo điều kiện thuận lợi cho sự khuếch tán nhanh chóng của dung môi và tăng cường truyền khối của các hợp chất nội bào [22]. Các ứng dụng gần đây tập trung vào việc sử dụng năng lượng điện xung như một kỹ thuật chiết xuất (PEF-hỗ trợ văn bản) từ các sản phẩm sinh học, thực phẩm và nông nghiệp [23]. Với xử lý PEF, có thể thu được các chất chiết xuất có độ tinh khiết cao hơn, tăng tỷ lệ chiết xuất của hợp chất có hoạt tính sinh học như polyphenol, carotenoid hoặc anthocyanins, đồng thời loại bỏ việc sử dụng các dung môi hữu cơ và rút ngắn thời gian chiết xuất [24,25]. Xử lý PEF đã được áp dụng thành công để chiết xuất các hợp chất có giá trị từ các nguồn biển khác nhau, chẳng hạn như asprotein [26–28], carbohydrate [29,30], lipid [31,32] và các sắc tố như carotenoids, chlorophylls hoặc phycocyanins [22,33 , 34] từ vi tảo và rong biển.

Vì vậy, mục tiêu chính của nghiên cứu này là đánh giá các ứng dụng mỹ phẩm tiềm năng của chiết xuất PEF từ ba loài tảo thực vật mọc ở Iceland: U. lactuca (tảo lục lam), A. esculenta (tảo nâu) và P. palmata (tảo biển đỏ) . Inan nỗ lực phát triển các thành phần hữu cơ và tự nhiên cho các công thức xanh, phân tách PEF hỗ trợ đã được đề xuất như một giải pháp thay thế thân thiện với môi trường cho phân ly hữu cơ truyền thống. Sau quá trình chiết xuất, dung dịch nướcrong biểnchiết xuất được đặc trưng về hàm lượng polyphenol, flavonoid và carbohydrate. Hơn thế nữa,chất chống oxy hóacác đặc tính và hoạt động ức chế enzym được đánh giá bằng cách sử dụng các phép đo hoạt tính in vitro. Các kết quả được báo cáo ở đây sẽ cung cấp cơ sở để nâng cao sự hiểu biết về tảo biển mọc, đỏ và xanh lá cây để tạo ra các thành phần hoạt tính cho các công thức cải tiến trong các sản phẩm mỹ phẩm có chứa các hợp chất hoạt tính sinh học được phân lập từ các nguồn tự nhiên và bền vững.

2. Kết quả và thảo luận

2.1. Khai thác do PEF hỗ trợ để xử lý sinh khối rong biển Iceland

Kết quả cho thấy độ dẫn điện cao nhất trong huyền phù được điều chế từ A. esculenta, tiếp theo là P. palmata và U. lactuca (p <{{0}}. 05)="" (bảng="" 1).="" tuy="" nhiên,="" tác="" động="" của="" loại="" điều="" trị="" không="" được="" xác="" định="" là="" có="" ý="" nghĩa="" (p=""> 0,05). Phép đo độ dẫn điện đã được các tác giả khác sử dụng thành công để đánh giá hiệu quả của việc điều trị PEF trong các mô sinh học đối với việc giải phóng các chất ion nội bào, do đó làm tăng tính thấm qua màng tế bào [35–37].

Trong nghiên cứu của chúng tôi, kết quả không chỉ ra sự giải phóng mạnh hơn các chất này bởi PEF, vì những thay đổi về độ dẫn điện gây ra bởi các phương pháp xử lý chiết xuất có xu hướng làm huyền phù CTNH cao hơn. Các nghiên cứu trước đây đã kết luận rằng độ dẫn điện ban đầu của môi trường nội bào ảnh hưởng đến hiệu quả kết hợp điện nhưng vẫn chưa có sự thống nhất về mối quan hệ tích cực hay tiêu cực giữa hai yếu tố này [38]. Trong nghiên cứu của chúng tôi, có sự khác biệt lớn giữa độ dẫn điện của huyền phù A. esculenta và hai loài còn lại, điều này không được phản ánh ở mức độ thay đổi độ dẫn điện trong quá trình xử lý chiết xuất. Người ta đã tuyên bố rằng hàm lượng tro của rong nâu có thể chiếm trên 50 phần trăm trọng lượng khô của nó [39], bao gồm phần lớn các ion, điều này có thể giải thích một phần độ dẫn điện cao trong huyền phù A. esculenta so với hai loài còn lại.

Kết quả cho thấy rằng độ pH trong huyền phù của U. lactuca thấp hơn so với hai loài còn lại, nhưng không có tác dụng rõ ràng nào từ loại chiết xuất được tạo ra. Nhiệt độ đã tăng từ 22 ± 1◦C trước khi xử lý, lên 95 ◦C theo CTNH (đối với tất cả các loài), lên 36. 0 ± 1. 0 ◦C, 46,3 ± 0. 6 ◦C và 51. 0 ± 1◦C bởi PEF, ở A. esculenta, P. palmata và U. lactucasuspensions. Xu hướng tương tự cũng được nhận thấy đối với các nhóm được điều trị bằng PEF, sau đó được tiếp tục đốt nóng bởi CTNH. Sự gia tăng nhiệt độ được gây ra bởi sự chuyển đổi năng lượng điện thành nhiệt năng (làm nóng ohmic), trong huyền phù trong quá trình xử lý PEF. Mức độ tăng nhiệt độ được biết là tỷ lệ với dòng điện áp dụng nhưng tỷ lệ nghịch với độ dẫn điện. Điều này có thể giải thích tại sao P. palmata andU. lactuca đạt nhiệt độ cao hơn trong quá trình xử lý PEF mặc dù chúng có độ dẫn thấp hơn A. esculenta.

2.2. Quang phổ hấp thụ UV-VIS của chiết xuất rong biển Iceland

Các loại tảo biển được nghiên cứu khác nhau về cấu trúc quang phổ (Hình 1), cho thấy rằng thành phần và khả năng hấp thụ tia cực tím khác nhau giữa các loài. Tuy nhiên, kỹ thuật chiết xuất loại hạt không cho thấy hiệu quả rõ rệt trong phổ hấp thụ UV; các chất chiết xuất từ ​​rong biển cho thấy các cấu hình hấp thụ tương tự nhau bất kể phương pháp chiết xuất nào.

Phổ hấp thụ UV của tảo lục U. lactuca cho thấy đỉnh nổi bật trong dải UV-B (280–320 nm) (Hình 1a), trong khi các chất chiết xuất từ ​​tảo nâu A. esculent cho thấy không có sự hình thành vùng hấp thụ rõ ràng (Hình 1c ). Tuy nhiên, các kết quả cho thấy độ hấp thụ a mạnh hơn ở bước sóng 220 nm trong dịch chiết A. esculenta so với U. lactuca và P. palmatach, được cho là do hàm lượng cao của các hợp chất phenol trong A. esculenta (Bảng 2). Mức tối đa hấp thụ trong phạm vi này có liên quan đến mối liên kết giữa các hợp chấtphenolic và alginat. Mối quan hệ này được cho là để bảo toàn khả năng hấp thụ tia cực tím của các hợp chất phenolic theo thời gian [40].

Một phát hiện thú vị hơn là kết quả thu được đối với chất chiết xuất từ ​​tảo đỏ, P. palmata đã hấp thụ một phần bức xạ UV-A (320-400 nm). Người ta đã biết rằng tảo đỏ tích tụ các hợp chất quang bảo vệ có khả năng hấp thụ bức xạ tia cực tím như axit amin giống mycosporine (MAA), hấp thụ trong vùng UV cụ thể này [41]. P. palmata xuất sắc trong phổ hấp thụ UV với các đỉnh nổi bật nằm trong khoảng từ 320 đến 340 nm phù hợp với sự hiện diện của các MAA hấp thụ trong phạm vi này [42], chẳng hạn như palythinol (đỉnh hấp thụ ở 332 nm), asterina -330 (picat hấp thụ 330 nm), porphyra -334 (cực đại hấp thụ ở 334 nm) và những chất khác [43]. Bởi vì các điều kiện chiết xuất, chẳng hạn như loại dung môi, được biết là ảnh hưởng đến hiệu quả chiết xuất, các kết quả trong nghiên cứu hiện tại được so sánh với các nghiên cứu trước đây về chiết xuất MAAs bằng nước từ P. palmata. Trong các nghiên cứu này, các đỉnh cực đại hấp thụ được phát hiện ở bước sóng 325 đến 330 nm [44], như trong nghiên cứu này. Do đó, có thể giả định rằng các âm quan sát được trong khoảng từ 320 đến 340 nm có thể là do sự hiện diện của MAA.

Sự khác biệt trong quang phổ hấp thụ giữa 350 và 700 nm đã được giải thích bằng sự hiện diện của các sắc tố phụ khác nhau trong các hệ thống quang học tương ứng của tảo lục lam, nâu và đỏ, chlorophyll-b (450–500 nm), fucoxanthin (400–500 nm) và phycoerythrin (600–650 nm) tương ứng [45]. Nồng độ của các hợp chất hòa tan trong nước trong các chất chiết xuất có tác động mạnh hơn. Do đó, mô hình phản ánh sự khác biệt về hàm lượng giữa các loài tảo không rõ ràng trong nghiên cứu này.

2.3. Tổng hàm lượng Phenolic, Flavonoid và Carbohydrate trong chiết xuất rong biển Iceland

Tổng hàm lượng phenolic trongrong biểns dao động từ 1592 đến 9368 µg GAE / g dw (Bảng 2). Tảo nâu A. esculenta cho thấy số lượng cao nhất (p <0. 0="" 5)="" của="" các="" hợp="" chất="" phenolic="" (giá="" trị="" trung="" bình="" 8869,7="" µg="" gae="" g="" dw),="" tiếp="" theo="" là="" p.="" palmata="" (giá="" trị="" trung="" bình="" 1806,2="" µg="" gae="" g="" dw)="" và="" u.="" lactuca="" (giá="" trị="" trung="" bình="" 1750,7="" µg="" gae="" g="" dw)="" (không="" có="" sự="" khác="" biệt="" đáng="" kể="" giữa="" chiết="" xuất="" p.="" palmata="" và="" u.="" lactuca)).="" đối="" với="" mỗi="" loài="" rong="" biển,="" hàm="" lượng="" polyphenol="" không="" khác="" nhau="" giữa="" các="" phương="" pháp="" khai="" thác="" ngoại="" trừ="" u.="" lactuca,="" kết="" quả="" cho="" thấy="" ctnh="" là="" kỹ="" thuật="" hiệu="" quả="" nhất="" (p=""><0,05). tuy="" nhiên,="" những="" nhược="" điểm="" của="" pef="" bao="" gồm="" bản="" chất="" không="" nhiệt,="" thời="" gian="" khai="" thác="" ngắn="" hơn="" (10="" phút="" so="" với="" 45="" phút)="" và="" quy="" trình="" xanh="" cần="" được="" nhấn="">

Trong số ba nhóm tảo, tảo macroalgae nâu chứa một số lượng polyphenol cao hơn tảo vĩ mô đỏ và xanh lục. Kết quả phù hợp với các nghiên cứu ban đầu [46,47] đã báo cáo rằng các loài tảo nâu (ví dụ: A. esculenta và Saccharina latissma) có hàm lượng phenol cao hơn các loài đỏ (P. palmata) và xanh lá cây (ví dụ: U. lactuca). Điều này được hỗ trợ bởi các tác giả khác [48], những người kết luận rằng hàm lượng polyphenol trung bình là đặc trưng cho loài (A. esculenta> S. latissma> P. palmata) và hàm lượng phenol ở A. esculenta cao hơn 3 lần so với các loài khác ( A. esculenta: 37 mgphloroglucinol đương lượng (PGE) / g dw; S. latissma: 8 mg PGE / g dw; P. palmata: 5 mgGAE / g dw). Hơn nữa, trong cùng một nghiên cứu, các tác giả báo cáo rằng hàm lượng polyphenol thay đổi theo mùa, trong khi sự khác biệt về không gian (tảo được thu hoạch ở Na Uy, Pháp và Iceland) cho thấy một tác động nhỏ. Ví dụ, Gager et al. (2020) nhận thấy rằng có ảnh hưởng đáng kể của sự thay đổi theo mùa trong hàm lượng polyphenol của A. esculenta, với hơn 300 mg GAE / g DW vào mùa thu so với dưới 20 mg GAE / g DW thời gian kiểm tra. Phlorotannin từ bảy loại rong biển nâu được thu hoạch thương mại ở Brit tany (Pháp) được phát hiện bằng 1 H NMR và các thử nghiệm trong ống nghiệm: sự biến đổi theo thời gian và khả năng định giá trong các ứng dụng mỹ phẩm. Các mẫu của chúng tôi được thu thập vào tháng 7 (U. lactuca andA. Esculenta) và vào tháng 11 (P. palmata). Trong nghiên cứu của Roleda [48], hàm lượng trung bình của A. esculenta từ Trondheim, Na Uy (không được thu thập ở Iceland) vào mùa hè là 40 mg PGE / g dw và P. palmata từ Iceland nhưng là 4 mg GAE / g dw vào mùa thu. Giá trị cao hơn được báo cáo so với nghiên cứu của chúng tôi có thể được giải thích bởi phương tiện chiết xuất được sử dụng (80:20 axeton: nước), có khả năng dẫn đến năng suất chiết xuất cao hơn. Hàm lượng polyphenol cao hơn cũng được tìm thấy trong các chất chiết xuất từ ​​A. esculenta bằng cách sử dụng hỗn hợp etanol và nước (50:50) với sóng siêu âm [49]. Tuy nhiên, sử dụng cùng một môi trường chiết xuất và chiết xuất bằng dung môi lớp, A. esculenta được báo cáo là chứa 44,1 mg GAE / 100 g dw chất chiết xuất không nước [50], tương đối giống với chất được quan sát trong nghiên cứu này.

Hàm lượng flavonoid trung bình là cụ thể theo loài (A. esculenta> U. lactuca> P. palmata; (p <0. {{1 0}} 5) (Bảng 2). Lượng flavonoid được quan sát thấy đối với chất chiết xuất từ ​​A. esculenta (giá trị trung bình 12098,7 µg QE / g dw), trong khi hàm lượng thấp hơn được tìm thấy đối với U. lactuca (giá trị trung bình 4152,4 µg QE / g dw), và hàm lượng tối thiểu được xác định đối với chất chiết xuất từ ​​P. palmata ( giá trị trung bình 905,8 µg QE / g dw). Tương tự như hành vi được tìm thấy đối với tổng hàm lượng phenolic, loại công nghệ chiết xuất không có ảnh hưởng đáng kể đến flavonoidcontent (p> 0,05), ngoại trừ U. lactuca. Kết quả cho thấy CTNH và sự kết hợp của cả hai kỹ thuật (PEF cộng với HW) là những kỹ thuật hiệu quả nhất để tách các flavonoid ở U. lactuca (p <0,05).

Có rất nhiều nghiên cứu về hàm lượng flavonoid trong thực vật trên cạn, nhưng các nghiên cứu về hàm lượng flavonoid trong tảo rất khan hiếm [51] và đặc biệt là ở các loài được nghiên cứu trong tài liệu hiện tại. Cụ thể, nghiên cứu của Ummat et al. [49] báo cáo rằng ngoại chất được hỗ trợ bởi siêu âm đã tăng cường sự phục hồi của flavonoid trong tất cả 11rong biểns được khảo sát (bao gồm A. esculenta) so với chiết xuất bằng dung môi thông thường sử dụng hỗn hợp 50% etanol. Trong một nghiên cứu khác, flavonoid được định lượng trong chiết xuất methanolic của bốn loài Ulva (Ulva clathrata, Ulva linza, Ulva flexuosa và Ulva gutis) được trồng ở các vùng khác nhau của bờ biển phía bắc của Vịnh Ba Tư ở phía nam Iran; hàm lượng flavonoid của chiết xuất tảo dao động từ 8 đến 33 mg RE / g dw [52]. Tuy nhiên, các nghiên cứu trước đây của cùng một nhóm nghiên cứu đã phát hiện ra những thay đổi rõ rệt trong các thành phần hóa học với sự thay đổi của các mùa và điều kiện môi trường [53]. Do đó, hơi khó để có một cái nhìn tổng quan đầy đủ về thư mục của các hợp chất hoạt tính sinh học này trongrong biểns, do thiếu nguồn tìm kiếm được công bố sẵn có, mà còn do những thay đổi trong hàm lượng flavonoid bị ảnh hưởng bởi điều kiện trồng trọt và vị trí địa lý.

Mean carbohydrate content of produced extracts was also species-specific (P. palmata >U. lactuca> A. esculenta; p <0. 05)="" (bảng="" 2).="" hàm="" lượng="" dao="" động="" từ="" 44,8="" đến="" 510="" mg="" glue="" gdw="" tùy="" thuộc="" vào="" loài="" tảo.="" rong="" biển="" chứa="" một="" lượng="" lớn="" polysaccharid="" có="" chức="" năng="" quan="" trọng="" đối="" với="" các="" tế="" bào="" vĩ="" mô="" bao="" gồm="" hỗ="" trợ="" cấu="" trúc="" và="" dự="" trữ="" năng="" lượng.="" ví="" dụ,="" phần="" chính="" của="" thành="" tế="" bào="" rong="" biển="" màu="" đỏ="" và="" nâu="" được="" đại="" diện="" bởi="" các="" galactan="" đã="" được="" sulfat="" hóa,="" được="" gọi="" là="" agar,="" alginate="" và="" carrageenan="" [54].="" tảo="" đỏ="" p.="" palmata="" có="" hàm="" lượng="" carbohydrate="" cao="" nhất="" (giá="" trị="" trung="" bình="" 441="" mgglue="" g="" dw).="" kết="" quả="" phù="" hợp="" với="" các="" nghiên="" cứu="" trước="" đó="" báo="" cáo="" nồng="" độpolysaccharide="" cao="" nhất="" ở="" các="" loài="" palmaria="" [55].="" hơn="" nữa,="" mutripah="" et="" al.="" [56]="" đã="" mô="" tả="" tổng="" hàm="" lượng="" carbohydrate="" của="" p.="" palmata="" là="" 469="" mg="" g="" rong="" biển="" khô,="" tương="" đối="" giống="" với="" hàm="" lượng="" được="" quan="" sát="" trong="" nghiên="" cứu="">

Tảo lục U. lactuca có hàm lượng lên đến 249,5 mg GluE / g tùy thuộc vào kỹ thuật chiết xuất được sử dụng (Bảng 2). Dựa trên tài liệu, U. lactucahas cellulose hòa tan trong nước và không hòa tan tương ứng với polysaccharides cấu trúc với thành phần chính gọi là ulvan, đóng góp từ 9 đến 36 phần trăm trọng lượng khô [57]. Ulvan chủ yếu bao gồm rhamnose sulfat hóa, axit uronic (glucuronicacid và axit iduronic) và xylose. Do bản chất phân cực của nó, khả năng hòa tan của các dung dịch không nước ulvan được tăng cường bằng cách chiết ở nhiệt độ cao (8 0 - 90 ◦C) [58]. Nhiệt độ chiết tách có thể là lý do tại sao tổng hàm lượng carbohydrate của U. lactucaextracts được tạo ra bằng cách chiết xuất bằng nước nóng truyền thống và sự kết hợp của cả hai loại (PEF cộng với HW) cao hơn (p <0,05) so="" với="" hàm="" lượng="" đạt="" được="" khi="" chỉ="" sử="" dụng="">

Mặt khác, các tác giả khác nhấn mạnh tầm quan trọng của hàm lượng polysaccharide variationin theo mùa. Ví dụ, Schiener và cộng sự, tuyên bố xác định các biến đổi theo mùa và dự đoán thời điểm thu hoạch tốt nhất cho tảo bẹ. Phân tích thành phần theo mùa của A. esculenta đã chứng minh rằng giá trị tối đa của cacbohydrat trùng hợp với sự giảm nồng độ của protein, tro, polyphenol và độ ẩm [39]. Theo các tác giả, các mối quan hệ này, thay đổi giữa các mùa và các loài, có thể được sử dụng bởi các ngành công nghiệp để tối ưu hóa sản lượng của cácrong biểncác thành phần.

2.4. Khả năng chống oxy hóa của chiết xuất tảo biển Iceland

A. esculenta có hoạt động thu dọn DPPH mạnh nhất trong số các chất chiết xuất thô của ba loài tảo (p <{{0}}. 05),="" với="" hiệu="" quả="" nhặt="" rác="" cao="" hơn="" 90%="" (bảng="" 3).="" dung="" dịch="" tiêu="" chuẩn,="" a.="" esculenta="" cho="" thấy="" hoạt="" tính="" thu="" gom="" có="" ​​thể="" so="" sánh="" được="" với="" 100="" µg="" ml="" axit="" ascorbic="" (87,9="" phần="" trăm),="" axit="" gallic="" (91,0="" phần="" trăm)="" và="" -tocopherol="" (87,9="" phần="" trăm).="" kết="" quả="" của="" chúng="" tôi="" phù="" hợp="" với="" các="" nghiên="" cứu="" gần="" đây="" [50],="" các="" nghiên="" cứu="" này="" cũng="" cho="">chất chống oxy hóahoạt động của các chất chiết xuất từ ​​A. esculenta. Đáng ngạc nhiên, không có sự khác biệt đáng kể trongchất chống oxy hóahoạt động được quan sát giữa các phương pháp chiết xuất khác nhau được thử nghiệm (p> 0. 05). Người ta mong đợi rằng các chất chiết xuất từ ​​PEF sẽ thể hiện giá trị chống oxy hóa tốt hơn so với các chất chiết xuất được tạo ra bằng cách chiết xuất truyền thống nóng vì các nghiên cứu khác đã chỉ ra rằng các kỹ thuật xanh (như chiết xuất có sự hỗ trợ của vi sóng hoặc chiết xuất bằng enzym) có hiệu quả tránh sự phân hủy các hợp chất hoạt tính sinh học, thể hiện khả năng chống oxy hóa cao hơn [59 , 60].

Khả năng củarong biểnchất chiết xuất để khử sắt (Fe3 cộng) thành ion sắt (Fe2 cộng) và khả năng loại bỏ gốc ABTS cũng được nghiên cứu, tương ứng bằng phương pháp FRAP và ABTS. Kết quả FRAP cho thấy xu hướng tương tự như DPPH, cho thấy A. esculenta có khả năng khử sắt (Fe3 cộng) thành ion sắt (Fe2 cộng) mạnh nhất trong số các chất chiết xuất thô của ba loài tảo (p <0. {{6}="" }="" 5).="" tuy="" nhiên,="" một="" hành="" vi="" khác="" đã="" được="" tìm="" thấy="" đối="" với="" abts.="" các="" chất="" chiết="" xuất="" từ="" ​​cỏ="" dại="" cho="" thấy="" một="" khả="" năng="" tương="" tự="" để="" loại="" bỏ="" abts="" gốc="" (p=""> 0,05), cho thấy rằng những loài này có thể chứa một số hợp chất hiệu quả chịu trách nhiệm cho hoạt động nhặt rác của nó.

Nói chung, tảo nâu được biết là cóchất chống oxy hóatiềm năng so với họ đỏ và xanh [61]. Kết quả của chúng tôi cũng cho thấy rằng chất chiết xuất từ ​​nước từA. esculenta thể hiện các hoạt động chống oxy hóa hiệu quả liên quan đến việc loại bỏ các chất tự do và giảm năng lượng, cho thấy rằng A. esculenta có khả năng là một nguồn cung cấp các chất chống oxy hóa tự nhiên. Hoạt tính chống oxy hóa cao được quan sát thấy đối với chất chiết xuất từ ​​A. esculenta có thể liên quan đến hàm lượng cao trong các hợp chất phenol được xác định trong các chiết xuất algaeextract màu nâu. Trong nhiều nghiên cứu,chất chống oxy hóaHoạt động của chất chiết xuất từ ​​tảo đã được quy cho các hợp chất phenolic, cho thấy mối tương quan thuận giữa hàm lượng phenolic và khả năng nhặt rác chủ yếu với DPPH [62,63]. Các kết quả tương quan tương tự cũng được tìm thấy trong nghiên cứu hiện tại đối với chất chiết xuất từ ​​A. esculenta (xem thảo luận kỹ hơn trong Phần 2.6. Mối tương quan giữa các hợp chất hóa học và đặc tính hoạt tính sinh học).

2.5. Hoạt động ức chế enzym của chiết xuất rong biển Iceland

Tiếng Icelandrong biểnCác chất chiết xuất của s thể hiện tác dụng ức chế tích cực đối với tất cả các enzym bị tiêu hóa (Bảng 4), mở ra con đường mới cho việc khai thác các chất ức chế enzym tự nhiên từ các nguồn tảo. Theo hiểu biết của chúng tôi, đây là lần đầu tiên các hoạt động ức chế enzym của người Icelandrong biểnchất chiết xuất do PEF sản xuất đã được thử nghiệm.

2.5.1. Hoạt động ức chế collagenase

Các chất chiết xuất từ ​​A. esculenta cho thấy khả năng ức chế collagenase dương tính từ 68 đến 91 phần trăm, trong khi các chất chiết xuất từ ​​P. palmaria và U. lactuca thể hiện các hoạt động ức chế không đáng kể đối với collagenase (Bảng 4). Chiết xuất nước nóng A. esculenta thể hiện 71,1 phần trăm khả năng ức chế collagenase, cao hơn dung dịch chuẩn epigallocatechin -3- gallate (EGCG) (63,2 phần trăm) và có thể so sánh với chất chuẩn dương được cung cấp bởi bộ enzym thương mại (74,9 phần trăm). kết quả là các chất chiết xuất từ ​​A. esculenta do PEF sản xuất cho thấy ức chế acollagenase 91%, thể hiện hoạt tính thậm chí cao hơn chất ức chế được cung cấp bởi bộ công cụ thương mại. Cần lưu ý rằng hoạt động này chỉ được quan sát thấy trong các chất chiết xuất từ ​​nước do PEF sản xuất chứ không phải do sự kết hợp của PEF với CTNH. Hành vi này có thể được giải thích bởi khả năng quá trình nước nóng có thể có tác động tiêu cực đến các hợp chất chịu trách nhiệm ức chế hoạt động của collagenase. Tuy nhiên, các nghiên cứu bổ sung là cần thiết để giải thích những kết quả này do sự phức tạp của các chất chiết xuất từ ​​tảo thô. Nhóm nghiên cứu nói trên hiện đang nghiên cứu việc xác định các phân tử ức chế trong chất chiết xuất từ ​​A. esculenta để hiểu rõ hơn về những tác động tích cực do PEF tạo ra.

Các kết quả liên quan đến việc ức chế collagenase của chất chiết xuất từ ​​A. esculenta phù hợp với dữ liệu trước đó, trong đó A. esculenta đang được sử dụng trong các chất chiết xuất thương mại do tác dụng hấp dẫn của nó. Sự suy thoái của collagen xảy ra cùng với quá trình lão hóa do hoạt động của collagenase, dẫn đến các nếp nhăn trên da. Sự ức chế collagenase bởi các hợp chất có trong tự nhiên là một cơ hội thú vị cho các sản phẩm chống lão hóa. Ví dụ, SEPPIC, một nhà cung cấp các thành phần cho ngành công nghiệp mỹ phẩm, đang cung cấp một chiết xuất ưa mỡ củaA. esculenta (Kalpariane® AD) [64].

2.5.2. Hoạt động ức chế Elastase

Chỉ các chiết xuất thô của A. esculenta mới ức chế elastase, thể hiện các hoạt động cao hơn 7 0 phần trăm ức chế (Bảng 4). Tuy nhiên, các hoạt động chống elastase của A. esculenta extractdid không khác biệt về mặt thống kê giữa các phương pháp chiết xuất (p> 0. 05). So với quercetinsolutions, một chất ức chế elastase nổi tiếng cho thấy sự ức chế 100% ở 1 mM và 58,7% ở 0,5 mM, hiệu suất của các chất chiết xuất từ ​​A. esculenta là cao.

Elastase là một enzyme proteinase có thể làm giảm elastin bằng cách phá vỡ các peptide liên kết cụ thể. Do đó, sự ức chế hoạt động của elastase trong lớp hạ bì có thể được sử dụng để duy trì độ đàn hồi của da [65]. Nhiều chất chiết xuất từ ​​thực vật đã được xác định là chất ức chế elastase [17]; tuy nhiên, một số nghiên cứu đã được thực hiện về sự ức chế elastase từ các nguồn tảo. Theo dữ liệu tài liệu, polyphenol chiết xuất từ ​​thực vật được biết là chất ức chế elastase và hyaluronidase mạnh [66]. Một nghiên cứu gần đây báo cáo rằng phlorotannin, một loại tannin trong tảo nâu, chiết xuất từ ​​tảo bẹ biển Eisenia bicyclis và tảo Ecklonia cava, có lợi cho da bằng cách giảm đáng kể hoạt động của elastase [67]. Giá trị TPC và TFC cao nhất so với các loài khác được nghiên cứu (Bảng 4), vì vậy đây có thể là lý do tại sao các chất chiết xuất từ ​​P. palmaria và U. lactuca không cho thấy các hoạt động chống elastase. Để khẳng định giả thuyết này, phân tích tương quan Pearson đã được tiến hành, cho thấy rằng các hoạt động của enzym tương quan thuận với hàm lượng của các chất phenolic (xem phần thảo luận khác trong Phần 2.6. Mối tương quan giữa các hợp chất hóa học và hoạt tính sinh học).

2.5.3. Hoạt động ức chế Tyrosinase

Chất chiết xuất từ ​​A. esculenta cho thấy dương tínhtyrosinaseức chế cao hơn 9 0 phần trăm đối với tất cả các phương pháp tách chiết được sử dụng, trong khi các chất chiết xuất từ ​​P. palmaria và U. lactuca không thể hiện tác dụng ức chế tyrosinasein (Bảng 4). Tuy nhiên, các hoạt động chống tyrosinase của A. esculenta extractdid không khác nhau (p <0. 05)="" với="" các="" phương="" pháp="" chiết="" xuất.="" so="" sánh="" tác="" dụng="" của="" a.="" esculentaextracts="" với="" các="" dung="" dịch="" quercetin="" được="" thử="" nghiệm,="" các="" chất="" chiết="" xuất="" thô="" của="" tảo="" nâu="" cho="" thấy="" các="" hoạt="" động="" ức="" chế="" tốt="" hơn="" các="" dung="" dịch="" này="" (88="" và="" 75="" phần="" trăm="" đối="" với="" các="" dung="" dịch="" quercetinsolutions="" 0,5="" và="" 1="" mm,="" tương="" ứng).="" dựa="" trên="" các="" tài="" liệu,="" các="" hoạt="" động="" chống="" tyrosinase="" của="" thực="" vật,="" vi="" khuẩn="" và="" nấm="" đã="" được="" một="" số="" nhà="" nghiên="" cứu="" báo="" cáo="" [68].="" tuy="" nhiên,="" mặc="" dù="" có="" ý="" kiến="" ​​khác="" nhau="" rằng="" các="" hợp="" chất="" hoạt="" tính="" sinh="" học="" có="" nguồn="" gốc="" từ="" tảo="" biển="" có="" tiềm="" năng="" tốt="" được="" sử="" dụng="" làm="" chất="" làm="" trắng="" da="" [13],="" đây="" vẫn="" là="" một="" lĩnh="" vực="" chưa="" được="" khám="" phá="" và="" chỉ="" có="" các="" nghiên="" cứu="" mới="" được="" thực="" hiện.="" hầu="" hết="" các="" nghiên="" cứu="" được="" thực="" hiện="" trong="" lĩnh="" vực="" này="" đều="" tập="" trung="" vào="" tảo="" nâu,="" đồng="" ý="" với="" kết="" quả="" của="" nghiên="" cứu="" hiện="" tại,="" trong="" đó="" a.="" esculentaextracts="" thể="" hiện="" các="" hoạt="" động="" chống="" tyrosinase="" tốt="" nhất.="" ví="" dụ,="" các="" dẫn="" xuất="" phloroglucinol="" và="" phlorotannin,="" các="" chất="" chuyển="" hóa="" thứ="" cấp="" phổ="" biến="" được="" tìm="" thấy="" trong="" tảo="" nâu,="" có="" hoạt="" tính="" ức="" chế="" đối="" với="" tyrosinase="" do="" khả="" năng="" chelate="" đồng="" của="" chúng="" [69].="" trong="" một="" nghiên="" cứu="" gần="" đây,="" chiết="" xuất="" của="" tảo="" nâu="" lessonia="" trabeculate="" được="" tạo="" ra="" bằng="" phương="" pháp="" phân="" tách="" văn="" bản="" bằng="" vi="" sóng="" đã="" ức="" chế="" hoạt="" động="" tyrosinase="" là="" 33,73%="" [60].="" trong="" một="" nghiên="" cứu="" khác,="" chiết="" xuất="" từ="" ​​tảo="" sống="" turbinaria="" conoides="" cho="" thấy="" hoạt="" động="" như="">chất chống oxy hóavàtyrosinasechất ức chế, tuy nhiên, trong trường hợp này, etanol được sử dụng làm dung môi [70]. Mối tương quan đáng kể giữa hiệu lực ức chế của polyphenol chiết xuất từ ​​thực vật trên nấmtyrosinasehasbeen đã báo cáo trong các nghiên cứu trước đây [68]. Tương tự như vậy, kết quả của nghiên cứu này cho thấy rằng hoạt động ức chế đối với tyrosinase có tương quan thuận với hàm lượng flavonoid andphenolic (xem Phần 2.6. Mối tương quan giữa các hợp chất hóa học và các hoạt chất sinh học).

Tyrosinase đóng một vai trò quan trọng trong quá trình sinh tổng hợp sắc tố melanin trong da. Ngoài ra, nó có thể tạo ra các vấn đề về thẩm mỹ khi melanin được tích tụ dưới dạng các đốm tăng sắc tố [72]. Do đó, việc kết hợp chất ức chế tyrosinasein trong các sản phẩm mỹ phẩm có thể hấp dẫn do tác dụng làm trắng và hoặc làm sáng da.

cistanche có thể ức chế tyrosinase

2.5.4. Hoạt động ức chế Hyaluronidase

Tất cảrong biểnchất chiết xuất thể hiện hoạt tính kháng hyaluronidase cao đáng kể (Bảng 4), cho thấy kết quả tương đương với dung dịch axit tannic (một chất ức chế nổi tiếng hyaluronidase). Cụ thể, các chất chiết xuất từ ​​A. esculenta cho thấy 1 0 0 phần trăm ức chế đối với tất cả các themethods được thử nghiệm. Hơn nữa, các chất chiết xuất từ ​​U. lactuca thể hiện các hoạt động ức chế cao hơn 90 phần trăm, trong đó mức độ ức chế của các chất chiết xuất được tạo ra bởi PEF (96,8 phần trăm) và sự kết hợp của PEF cộng với HW (97,3 phần trăm) cao hơn sự ức chế được tạo ra bởi phương pháp ngâm nước nóng truyền thống 93,4 phần trăm) (p <0,05). tất="" cả="" các="" chất="" chiết="" xuất="" từ="" ​​p.="" palmaria="" đều="" thể="" hiện="" các="" hoạt="" động="" tương="" tự="" (p=""><0,05), sự="" ức="" chế="" của="" các="" chất="" chiết="" xuất="" do="" pef="" tạo="" ra="" là="" (91,9%)="" và="" sự="" kết="" hợp="" của="" pef="" cộng="" với="" hw="" (89,5%)="" và="" phương="" pháp="" nước="" nóng="" truyền="" thống="">

Các tác giả khác cũng mô tả hoạt động chống hyaluronidase của cácrong biểns chiết xuất, đặc biệt đối với chiết xuất giàu phlorotannin từ tảo nâu [73,74]. Tuy nhiên, theo hiểu biết của chúng tôi, đây là lần đầu tiên các hoạt động ức chế hyaluronidase của các chất chiết xuất từ ​​P. palmataand U. lactuca do PEF sản xuất đã được báo cáo.

Axit hyaluronic là một thành phần chính của lớp hạ bì, nơi nó tham gia vào tổ chức cơ, nó bị phá vỡ khi lão hóa, gây ra nếp nhăn và mất độ săn chắc của da. Theo nghĩa này, các chất ức chế hyaluronidase làm tăng nồng độ axit hyaluronic của chất ngoại bào da để cải thiện sự xuất hiện của da mặt bị lão hóa [13]. Do đó, kết quả của nghiên cứu này có thể mở ra con đường mới cho việc khai thác các chất ức chế hyaluronidase tự nhiên từ các nguồn tảo có thể sử dụng trong các sản phẩm mỹ phẩm.

Tóm lại, dữ liệu thu thập được cho phép chúng tôi kết luận rằng các chất chiết xuất từ ​​A. esculenta thể hiện các hoạt động ức chế tổng thể tốt hơn P. palmaria và U. lactuca đối với enzym được thử nghiệm. Do đó, là loài rong biển có triển vọng nhất với các hoạt tính kháng enzym tuyệt vời và do đó nó đã được chọn để nghiên cứu thêm trong phòng thí nghiệm của chúng tôi. Mặc dù các đoạn trích từ A. esculenta dường như là ứng cử viên tốt trong các thí nghiệm trong ống nghiệm, nhưng cần phải tiến hành các nghiên cứu tiếp theo để làm sáng tỏ danh tính của các chất chuyển hóa chịu trách nhiệm về các tác dụng sinh học này.

chiết xuất cistanche: chống oxy hóa

2.6. Mối tương quan giữa các hợp chất hóa học và các đặc tính hoạt tính sinh học

Kết quả từ phân tích thành phần chính (PCA), cho thấy sự phân tách chính của các nhóm được xác định bởi PC1 và PC2, lần lượt chiếm 71,9% và 14,5% phương sai trong dữ liệu (Hình 2). Các chất chiết xuất từ ​​A. esculenta được đặc trưng bởi hàm lượng flavonoid và hợp chất phenol cao hơn, tác dụng ức chế các enzym (collagenase, tyrosinase và elastase), và các giá trị DPPH và FRAP, so với các loài khác, P. palmata và U. lactuca. Mặt khác, A. esculenta có hàm lượng carbohydrate thấp hơn, đặc biệt là so với P. palmata (nằm ở phía đối diện của PC1). Sự biến đổi trong dữ liệu dọc theo PC2 chủ yếu liên quan đến sự ức chế ABTS và hyaluronidase.

Mối tương quan thuận cao và có ý nghĩa giữa TPC, TFC, DPPH, FRAP và tác dụng ức chế lên collagenase, elastase vàtyrosinaseđã được chứng minh bằng phân tích Pearsoncorrelation (Bảng 5).

Điều này đã đạt được thỏa thuận với các nghiên cứu trước đó, báo cáo rằng các hợp chất phenolic (bao gồm cả flavonoid) là những thành phần chính góp phần vào hoạt động chống oxy hóa của cácrong biển[75–77]. Hoạt tính chống oxy hóa cao của chiết xuất từ ​​tảo nâu có liên quan đến một nhóm polyphenol, phlorotannin cụ thể và cấu trúc phân tử độc đáo của chúng. Phlorotannis từ tảo nâu được báo cáo là có tới tám phenolrings liên kết với nhau hoạt động như bẫy điện tử [78,79]. Dự kiến ​​ABT sẽ tương quan với TPC, khácchất chống oxy hóathông số. Các lý do có thể xảy ra có thể là các phương pháp dựa trên các điều kiện phản ứng khác nhau và khả năng phản ứng khác nhau cả về thời gian và phạm vi của các thành phần. Ví dụ, thuốc thử ABTS phản ứng với phạm vi rộng hơnchất chống oxy hóasthan gốc DPPH [80]. Mặt khác, một trong những hạn chế được đề cập đối với ABTS là phản ứng kéo dài và thời gian phản ứng chung có thể không cho phép đạt được điểm cuối.

Kết quả chỉ ra rằng có mối tương quan thuận chiều cao giữa TPC và TFC với hoạt động ức chế của collagenase, elastase và tyrosinase ({{0}}. 93 - 0. 99), trong khi mối liên hệ với sự ức chế của hyaluronidase không mạnh bằng (r=0. 42 và 0,54, tương ứng). Điều này cho thấy rằng các thành phần khác có thể đã góp phần vào tác dụng ức chế của các hợp chất này. Các nghiên cứu khác đã báo cáo rằng polysaccharid có hoạt tính ức chế hyaluronidase, ví dụ, axit alginic trong tảo nâu [81,82]. Cần có các nghiên cứu sâu hơn về thành phần hóa học của các loài tảo vĩ mô đối với ảnh hưởng của các hợp chất phân lập lên theenzyme để đánh giá sự đóng góp của từng thành phần hóa học vì trong nghiên cứu này, trọng tâm là các chất chiết xuất thô.

Các phát hiện này phù hợp với các nghiên cứu trước đó, cho biết rằng thành phần hóa học và mức độ hoạt tính sinh học của các chất chiết xuất khác nhau đáng kể giữa ba loài tảo (tảo đỏ, xanh lục và nâu) và giữa các loài khác nhau thuộc cùng một loài và chịu ảnh hưởng của tuổi và mô. loại hình. Hơn nữa, thành phần và đặc điểm phụ thuộc vào nhiều yếu tố môi trường ảnh hưởng đến sự phân bố và tăng trưởng của tảo vĩ mô. Ví dụ, ánh sáng (bức xạ tia cực tím), nhiệt độ, chất dinh dưỡng sẵn có, tiếp xúc với không khí, chuyển động của nước, tiếp xúc với sóng và độ mặn. Nhiệt độ đã được mô tả là yếu tố ảnh hưởng mạnh nhất đến sự hình thành sắc tố và nồng độ chất dinh dưỡng, độ mặn và bức xạ UV là những yếu tố ảnh hưởng đến nồng độ của TPC [83].

Sự phân bố của các loài tảo vĩ mô khác nhau thay đổi theo độ sâu của nước. Các vị trí càng ở phía trên bờ trong vùng bãi triều hoặc vùng ven biển càng căng thẳng vì các loài sinh trưởng ở đó, phải chịu được nhiều thay đổi trong các yếu tố phi sinh học do sự thay đổi của thủy triều. Forinstance, hiệu ứng làm khô của không khí, bức xạ mặt trời cao (khi thủy triều xuống), thay đổi độ mặn và nhiệt độ, và trong điều kiện nhiệt độ không khí thấp, bao gồm cả đóng băng. Dưới vạch nước thấp, độ sâu tăng lên dẫn đến cường độ ánh sáng giảm rất nhanh và không tiếp xúc với bức xạ.

Tảo phát triển trong phạm vi thủy triều có độ nhạy thấp hơn với bức xạ UV và phục hồi nhanh hơn sau áp lực mặt trời. Trong khi tảo phát triển ở vùng dưới biển nhạy cảm hơn với bức xạ UV và có khả năng phục hồi thấp hơn khi bị căng thẳng mặt trời [84]. Đồng thời, cột nước cung cấp khả năng bảo vệ. Trong nghiên cứu này, P. palmata tiếp xúc với ánh sáng mặt trời mạnh hơn đáng kể so với các loài khác. Các nghiên cứu khác cho thấy sự hình thành MAA có liên quan trực tiếp đến ánh sáng mặt trời [85], bảo vệ các sinh vật chống lại bức xạ UV-A và UV-B. Hơn nữa, nó được chỉ ra rằng lượngMAA cụ thể giảm khi độ sâu thu thập ngày càng tăng. Các loài tảo bẹ như A. esculenta, được biết là sinh trưởng ở vùng dưới ven biển phía trên nhưng cũng mở rộng đến vùng triều thấp nhất ngay trên hình mờ dưới mực nước. Có nghĩa là cột nước cung cấp sự bảo vệ mạnh mẽ hơn so với P. palmata. U. lactuca, mọc chủ yếu ở vùng bãi triều và vùng ven biển có khả năng quang hợp và phát triển trong điều kiện có độ chiếu xạ rất thấp. Tiếp xúc với ánh sáng UVB đã được công bố để tăng tốc độ phục hồi các thông số quang hợp củaU. lactuca khỏi tác động tiêu cực của ánh sáng UVA. Nó nhỏ hơn, cấu trúc đơn giản hơn và sống lâu hơn (3 tháng) so với cả A. esculenta (5–7 năm) và P. palmata có một đợt phát triển mới hàng năm.

Tóm lại, các giả thiết có thể được rút ra rằng sự khác biệt chính về đặc tính của các chất chiết xuất là sự thay đổi về tuổi thọ, đặc điểm hình thái và điều kiện sinh trưởng của các loài tảo.

3. Vật liệu và Phương pháp

3.1. Vật liệu

Tiếng Icelandrong biểns U. lactuca (tảo lục), A. esculenta (tảo nâu) và P. palmata (tảo đỏ) được cung cấp bởi Icelandic Blue Mussel vàRong biển, nơi thu hoạch rong biển ở Breidafjordur (Tây-Iceland). Sau khi thu hoạch, rong biển được làm khô (khoảng 90% nguyên liệu khô), được xay và đóng gói chân không. Bảo quản mẫu ở nơi khô và tối ở nhiệt độ phòng cho đến khi sử dụng.

Tyrosinasetừ nấm, L -3, 4- dihydroxyphenylalanine (L-DOPA), elastase fromporcine tụy, axit ascorbic, N-Succinyl-Ala-Ala-Ala-p-nitroanilide (AAAPVN), hyaluronidase từ tinh hoàn bò , quercetin, -tocopherol, axit tannic, 2, 2- diphenyl -1- picrylhydrazyl (DPPH), 2,4, 6- Tripyridyl-s-Triazine (TPTZ), Trolox, Folin-Ciocalteu thuốc thử, axit gallic và bộ dụng cụ đo màu hoạt tính collagenase (MAK293) đã được mua từ Công ty Sigma-Aldrich (St. Louis, MO, Hoa Kỳ). Muối natri axit hyaluronic được mua từMakingCosmetics (Redmond, WA, Mỹ). Tất cả các hóa chất và thuốc thử khác được sử dụng đều là loại tinh khiết phân tích và được lấy từ VWR International, LLC. Nước khử ion (Elix® Essential, Merck, Darmstadt, Đức) được sử dụng để chiết xuất và chuẩn bị các dung dịch gốc nước.

3.2. Thiết kế thử nghiệm

Thiết kế giai thừa được sử dụng để đánh giá tác động của các loài rong biển Iceland (U. lactuca, A. Esculenta, P. palmata) và xử lý chiết xuất (khai thác nước nóng (HW, 95 ◦C)), chiết xuất PEF hỗ trợ (PEF) và sự kết hợp của cả hai kỹ thuật (PEF cộng với HW), về thành phần chiết xuất và hoạt tính sinh học (Bảng 6). Việc chiết xuất được thực hiện trong ba lần đối với mỗi nhóm và mỗi bản sao chiết xuất được phân tích trong ba lần.

3.3. Chiết xuất các hoạt chất sinh học từ rong biển Iceland

Việc khai thác sinh khối vĩ mô ở các cấp độ khác nhau đã thúc đẩy các nhà khoa học khám phá các kỹ thuật khai thác thân thiện với môi trường, hiệu quả và tiết kiệm chi phí hơn, các phương pháp khai thác dựa trên cây xanh. Trong nghiên cứu này, chiết xuất với sự hỗ trợ của PEF được đánh giá là một phương pháp mới và xanh để tạo ra các chiết xuất chức năng, trong khi chiết xuất bằng nước nóng truyền thống được sử dụng để so sánh. Hơn nữa, ảnh hưởng của sự kết hợp của cả hai kỹ thuật, xử lý PEF của tảo vĩ mô sau khi khai thác nước nóng truyền thống, đối với sự phục hồi hoạt tính đã được nghiên cứu. Do sự kết hợp điện dự kiến ​​được tạo ra trong cellmembranes sau khi xử lý vật lý, quá trình chiết xuất sau đây bằng nước nóng có thể tạo điều kiện thuận lợi cho việc giải phóng vật liệu nội bào [86], làm tăng năng suất chiết xuất. Cần một thời gian sau khi xử lý cho vật liệu để khuếch tán ra khỏi tế bào [87,88], và trong thí nghiệm này, huyền phù đợi qua đêm cho đến khi tách chất lỏng (chiết xuất) khỏi bột giấy.

Về môi trường chiết, nước cất được sử dụng để sản xuấtrong biểnchất chiết xuất để khắc phục những hạn chế liên quan đến việc sử dụng các dung môi độc tố và hữu cơ. Nước được chứng minh là một dung môi tốt để chiết xuất một số hợp chất hoạt tính sinh học từrong biểns [46,89–91] và thân thiện với môi trường. Ngoài ra, nước thường được sử dụng để khai thác với sự hỗ trợ của PEF vì nó là chất dẫn điện tốt.

3.3.1. Thủ tục chiết xuất

Đối với mỗi bản sao trong mỗi nhóm,rong biểns (15 g) được ngâm qua đêm ở nhiệt độ phòng (22 ◦C) trong nước khử ion (300 mL). Sau đó, huyền phù được xử lý bằng PEF (PEF), gia nhiệt (HW) hoặc cả xử lý và gia nhiệt bằng PEF (PEF cộng với HW). Các huyền phù được giữ qua đêm trong tủ lạnh, sau đó lọc bằng giấy lọc thô (20 µm).

Việc trích xuất có sự hỗ trợ của điện trường xung được thực hiện bằng cách sử dụng một máy phát xung được lắp sẵn trong nhà. Nó có tụ điện FuGHCK -200-2000 (FuG Elektronik GmbH, Rosenheim, Đức) và khe hở tia lửa điện (18,5 kV OG75, Perkin-Elmer Optoelectronics, GMBH, Wiese baden, Đức). Thiết bị PEF tạo ra các xung phân rã theo cấp số nhân với độ rộng 0. 96 µs và biên độ 18 kV. Một buồng xử lý bằng thủy tinh có kích thước (L × H × W) 20 × 8 × 2,5 cm, với khoảng cách ngắn nhất là giữa các điện cực tấm được sử dụng để xử lý huyền phù bằng điện trường 8 kV / cm ở 1,2 Hz trong 10 phút.

Dịch chiết CTNH được điều chế bằng cách đun nóng huyền phù trong cốc trong bể nước ổn nhiệt và giữ ở 95 ◦C trong 45 phút. Đối với điện trường xung kết hợp và xử lý gia nhiệt, huyền phù được xử lý PEF và sau đó được đặt vào cốc, đun nóng trong chậu nước, và giữ ở 95 ◦C trong 45 phút.

3.3.2. Các phép đo độ dẫn điện, pH và nhiệt độ

Độ dẫn điện và độ pH của huyền phù tảo biển được đo sau quá trình ngâm và sau khi xử lý chiết xuất, ở nhiệt độ phòng, sử dụng máy đo pH (Máy đo pH / Độ dẫn điện OrionStar ™ A215, Thermo Scientific, Waltham, MA, USA) được trang bị cảm biến độ dẫn điện và Điện cực kết hợp triode pH / ARC. Hơn nữa, sự thay đổi nhiệt độ do các phương pháp điều trị đã được ghi lại.

3.4. Hồ sơ quang phổ của chiết xuất rong biển

Phổ hấp thụ UV-VIS của các chất chiết xuất từ ​​rong biển khác nhau được đo trong phạm vi từ 200 đến 450 nm bằng cách sử dụng máy đo quang phổ UV Vis tia cực tím Thermo Scientific Evolution 350 (Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, Hoa Kỳ) với ống dẫn thạch anh 1 cm. Ba lần quét được thực hiện cho mỗi chiết xuất rong biển.

3.5. Xác định tổng hàm lượng polyphenolic

Tổng hàm lượng phenol (TPC) trongrong biểnchất chiết xuất được xác định bằng cách sử dụng thuốc thử Folin-Ciocalteu theo một phương pháp được sửa đổi một chút được mô tả bởi Zhang [92] sử dụng máy quang phổ aMultiskan Sky Microplate (Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, USA). Một thể tích 20 µL củarong biểndịch chiết hoặc dung dịch chuẩn nối tiếp được trộn với 100 µL thuốc thử Folin – Ciocalteu (10% trong nước cất). Sau 5 phút, 80 µL dung dịch natri cacbonat 7,5% (v / w) được thêm vào. Hỗn hợp phản ứng được ủ ở nhiệt độ phòng và tối trong 30 phút. Độ hấp thụ được đo ở bước sóng 60 nm. Nước cất được sử dụng làm mẫu trắng. Đường cong chuẩn của axit gallic được sử dụng để xác định tổng hàm lượng phenol và được biểu thị bằng µg đương lượng axit gallic (GAE) trên một gam vật liệu khô (µg GAE / g dw).

3.6. Xác định tổng hàm lượng Flavonoid

Tổng hàm lượng flavonoid (TFC) trongrong biểnchiết xuất được xác định bằng phương pháp do Kamtekar [93] mô tả và được điều chỉnh cho phù hợp với 96- các vi mẫu tốt. Tóm lại, một thể tích 25 µL chiết xuất rong biển hoặc dung dịch chuẩn nối tiếp được trộn với 1 0 0 µL natri nitrit (0,375% w / v). Sau 5 phút, 25 µL nhôm clorua (3% trọng lượng / thể tích) được thêm vào hỗn hợp và ủ trong 6 phút ở nhiệt độ phòng. Sau đó, 100 µL natri hydroxit (2% trọng lượng / thể tích) được thêm vào hỗn hợp và trộn. Ngay lập tức, độ hấp thụ được đo ở bước sóng 510 nm. Nước cất và etanol được sử dụng làm mẫu trắng. Đường cong chuẩn của quercetin (hòa tan trong etanol) được sử dụng để xác định tổng hàm lượng phenol và được biểu thị bằng µg đương lượng quercetin (QE) trên một gam vật liệu khô (µg QE / g dw).

3.7. Xác định hàm lượng cacbohydrat

Hàm lượng đường tự do được đo theo phương pháp được mô tả bởi [94], với những sửa đổi nhỏ. 50 µL dung dịch phenol (4%) và 250 µL axit sulfuric (96%) được thêm vào 100 µL mẫu hoặc dung dịch chuẩn. Sau 10 phút ủ ở nhiệt độ phòng, độ hấp thụ của hỗn hợp được đọc ở bước sóng 490 nm. Một đường cong chuẩn của glucose được sử dụng để xác định tổng hàm lượng carbohydrate và được biểu thị bằng mg đương lượng củaglucose (GluE) trên một gam nguyên liệu khô (mg GluE / g dw).

3.8. Đặc tính chống oxy hóa của chiết xuất tảo biển

3.8.1. 2,2 Diphenyl -1- picrylhydrazyl (DPPH) Xét nghiệm nhặt rác gốc tự do

Cácchất chống oxy hóahoạt động (DPPH) củarong biểnchất chiết xuất được xác định theo phương pháp đã mô tả trước đây [94] với một số sửa đổi. Một cách ngắn gọn, 200 µL dung dịch DPPH 10,825 × 10−5 M được thêm vào 100 µL mẫu (1: 1 trong metanol) trong một đĩa giếng 96-. Cùng một thể tích DPPH được trộn với 50 µL chất chuẩn cộng với 50 µL metanol. Sau đó, mẫu và chất chuẩn được ủ ở nơi tối ở nhiệt độ phòng trong 30 phút. Độ hấp thụ được đo ở bước sóng 517 nm. Nước cất được sử dụng làm mẫu trắng. Khả năng quét gốc DPPH được tính toán bằng cách sử dụng kết quả sau:

Hiệu ứng nhặt rác (phần trăm)=(1 - (Mẫu thử - Mẫu trắng) / (Mẫu chứng - Mẫu trắng Amethanol)) × 100 (1)

trong đó Acontrol là độ hấp thụ của mẫu chứng (dung dịch DPPH không có mẫu), mẫu A là độ hấp thụ của mẫu thử (dung dịch DPPH cộng với mẫu thử), mẫu trắng A là chỉ độ hấp thụ của mẫu (mẫu không có dung dịch DPPH) và Mẫu trắng metanol chỉ là độ hấp thụ của metanol. Quảng cáochất chống oxy hóas (axit ascorbic, axit gallic và -tocopherol) được sử dụng làm đối chứng dương tính.

cistanche là chất chống oxy hóa

3.8.2. Thử nghiệm công suất chống oxy hóa khử ion sắt (FRAP)

Hoạt tính FRAP được đo theo phương pháp của Benzie và Strain [95]. Tóm lại, đệm axetat (300 mM, pH 3,6), 2,4, 6- tripyridyl-s-triazine (TPTZ) 10 mM trong 40 mM HCl, và FeCl3 · 6H2O (20 mM) được trộn theo tỷ lệ 10: 1: 1 để có được FRAPreagent hoạt động. Hỗn hợp phản ứng được ủ ở 37 ◦C trong 10 phút. Một mẫu 50 µL từ mọi vật liệu được trộn với 150 µL dung dịch FRAP làm việc trong 8 phút ở nhiệt độ phòng. Độ hấp thụ của sản phẩm màu, Ferrous-TPTZ được đo ở bước sóng 593 nm. Giá trị FRAP củarong biểnCác chất chiết xuất được biểu thị bằng µM tương đương trolox (TE) trên một gam vật liệu khô.

3.8.3. 2,2 Azino-bis (3- ethylbenzothiazoline -6- Axit sulfonic) (ABTS)

Phân tích được thực hiện bằng cách sử dụng giao thức khử màu ABTS [76] với một số sửa đổi. Cation gốc ABTS (ABTS. Plus) được tạo ra bằng cách phản ứng ABTS (66 mg) với 1 0 mL dung dịch kali persulphat (2,45 mM). Để hỗn hợp trong nhiệt độ phòng tối trong 12–16 giờ trước khi sử dụng. ABTS. dung dịch cộng được pha loãng với nước đến độ hấp thụ 0,700 ở bước sóng 734. Hỗn hợp phản ứng (200 ul) được chuyển sang amicroplate, 50 µL mẫu được thêm vào và sau đó 150 µL dung dịch thuốc thử. Đĩa được lắc trong 10 s ở tốc độ trung bình và độ hấp thụ được đo ở bước sóng 734 nm sau 5 phút ủ ở nhiệt độ phòng. Một đường cong tiêu chuẩn được lập bằng cách vẽ đồ thị sự ức chế A734nm của chất chuẩn Trolox như một hàm của nồng độ của chúng. Tương đương Troloxechất chống oxy hóagiá trị dung lượng (TEAC) của các mẫu được tính toán bằng cách sử dụng hệ quả thu được từ hồi quy tuyến tính của đường cong chuẩn được thay thế bằng các giá trị A734nm cho mỗi mẫu:

TEAC (µM)=(ức chế mẫu A734nm - đánh chặn) / độ dốc (2)

Cácchất chống oxy hóahoạt tính được biểu thị bằng nồng độ TEAC, µmol / g tảo khô.

3.9. Hoạt động chống Enzym của chiết xuất tảo biển

3.9.1. Thử nghiệm ức chế collagenase

Một bộ xét nghiệm đo màu hoạt động collagenase (MAK293), mua từ Sigma Aldrich, được sử dụng để xác định sự ức chế collagenase củarong biểndịch chiết. Kit đo lường hoạt động của collagenase bằng cách sử dụng một peptide tổng hợp (FALGPA) mô phỏng cấu trúc của collagen. Quy trình được thực hiện theo hướng dẫn của kit.

3.9.2. Thử nghiệm ức chế Elastase

Sự ức chế elastase củarong biểnCác chất chiết xuất của s đã được khảo sát trong dung dịch đệm TRIS với phương pháp đã được sửa đổi như đã mô tả trước đó [96]. Tóm lại, 1 0 0 µL dung dịch đệm TRIS 0,1 M (pH 8,0), 25 µL elastase (1 U / mL trong dung dịch đệm TRIS) và 25 µL dịch chiết mẫu được trộn và ủ trong 15 phút ở 30 C trước khi thêm chất nền để bắt đầu phản ứng. Sau thời gian ủ, 50 µL dung dịch AAAPVN 2 mM được thêm vào. Sau đó, độ hấp thụ ở bước sóng 420 nm được theo dõi trong 20 phút bằng cách sử dụng đầu đọc vi tấm dưới nhiệt độ không đổi 30 C. Cuối cùng, sự ức chế elastase được tính theo phần trăm sử dụng công thức:

phần trăm ức chế=[(kiểm soát ∆Abs / phút - mẫu ∆Abs / phút) / ∆Abs / phút kiểm soát] × 100 (3)

trong đó Abscontrol là độ hấp thụ của xét nghiệm sử dụng chất đệm thay vì chất ức chế (mẫu) và mẫu Abs là độ hấp thụ của các chất chiết mẫu. Quercetin được sử dụng như một chất kiểm soát tích cực. Bộ đệm TRIS đã được sử dụng làm trống.

ảnh hưởng củachiết xuất cistanche:chống lão hóa

3.9.3. Thử nghiệm ức chế tyrosinase

Tyrosinasethử nghiệm ức chế được thực hiện theo phương pháp được mô tả trước đó bởi [66] sử dụng L-DOPA làm chất nền. 20 µL mẫu, 10 µL nấmtyrosinasedung dịch (50 U / mL trong đệm photphat) và 80 µL dung dịch đệm photphat (pH=6. 8) được trộn trong một vi tấm và ủ trước ở 37 ◦C trong 5 phút. Sau đó, 90 µL L-DOPA (2 mg / mL) được thêm vào. Sự hình thành dopachrome ngay lập tức được theo dõi trong 20 phút ở 475 nm trong một đầu đọc vi tấm dưới nhiệt độ không đổi 37 ◦C. Phần trăm ức chếtyrosinaseEnzyme đã được tính toán bằng cách sử dụng phương trình:

phần trăm ức chế=[(∆Abs / phút kiểm soát - mẫu ∆Abs / phút) / ∆Abs / phút kiểm soát] × 100 (4)

trong đó kiểm soát Abs là độ hấp thụ của phép thử sử dụng đệm thay vì chất ức chế (mẫu) và mẫu Abs là độ hấp thụ của các chất chiết mẫu. Quercetin được sử dụng làm chất kiểm soát tích cực. Dung dịch đệm photphat được sử dụng làm mẫu trắng.

3.9.4. Thử nghiệm ức chế Hyaluronidase

Hoạt động ức chế Hyaluronidase được đo lường như đã mô tả trước đây bằng [66] với các sửa đổi mới. Thể tích 1 0 0 µl loại -1- S tinh hoàn của bò hyaluronidase (21 0 0 U / mL) được hòa tan trong 0. Dung dịch đệm axetat 1 M (pH 3,5) được trộn với 100 µL dịch chiết và ủ ở 37 ◦C trong 20 phút. Một thể tích 200 µL canxi clorua 6 mM được thêm vào hỗn hợp này, và sau đó hỗn hợp này được ủ ở 37 ◦C trong 20 phút. Ca2 cộng với hyaluronidase hoạt hóa này được xử lý với 250 µL natri hyaluronat (1,2 mg / mL) hòa tan trong dung dịch đệm axetat 0,1 M (pH 3,5), và sau đó được ủ trong nồi cách thủy ở 37 ◦C trong 40 phút. Thêm 50 µL natri hydroxit 0,9 M và 100 µL natri borat 0,2 M vào hỗn hợp phản ứng và sau đó ủ trong nồi cách thủy sôi trong 5 phút. Sau khi làm lạnh đến nhiệt độ phòng, 250 µL dung dịch ρ-dimetylaminobenzaldehyde (DAMB) được thêm vào hỗn hợp phản ứng. Dung dịch DAMB được chuẩn bị bằng cách hòa tan 0,25 đif DAMB trong 21,88 mL axit axetic 100% và 3,12 mL axit clohydric 10N. Nhóm kiểm soát được xử lý với 100 µL 5% nước thay vì chiết xuất. Độ hấp thụ được đo ở bước sóng 585 nm sau 45 phút. Phần trăm ức chế enzym được tính theo công thức sau:

phần trăm ức chế=[(Abscontrol - Abssample) / Abscontrol] × 100 (5)

trong đó kiểm soát Abs là độ hấp thụ của phép thử sử dụng đệm thay vì chất ức chế (mẫu) và mẫu Abs là độ hấp thụ của các chất chiết mẫu. Axit tannic được sử dụng làm tiêu chuẩn tham chiếu.

3.10. Phân tích thống kê

Giá trị trung bình của phép phân tích ba lần của mọi trích xuất được tính toán và sử dụng để tìm các giá trị trung bình và độ lệch chuẩn cho mỗi nhóm (n {{0}}). Mô hình tuyến tính tổng quát (GLM) cho các yếu tố cố định được áp dụng để đánh giá các tác động chính và tương tác hai chiều của các yếu tố thực nghiệm (loài và phương pháp chiết xuất) trên các biến đo được. Hơn nữa, ANOVA và thử nghiệm Tukey-Kramer được sử dụng để xác định sự khác biệt có ý nghĩa (p <0,05) giữa="" các="" nhóm.="" tương="" quan="" pearson="" được="" sử="" dụng="" để="" đánh="" giá="" mối="" quan="" hệ="" tuyến="" tính="" giữa="" các="" biến.="" phân="" tích="" thành="" phần="" chính="" (pca)="" được="" sử="" dụng="" để="" phát="" hiện="" cấu="" trúc="" trong="" mối="" quan="" hệ="" giữa="" các="" biến="" đo="" lường="" và="" các="" yếu="" tố="" thực="" nghiệm.="" thepca="" giảm="" bớt="" dữ="" liệu="" khổng="" lồ="" xuống="" một="" tập="" hợp="" nhỏ="" các="" kết="" hợp="" tuyến="" tính="" của="" các="" biến="" có="" liên="" quan="" (tức="" là="" các="" nhân="" tố)="" dựa="" trên="" các="" mẫu="" tương="" quan="" giữa="" các="" biến="" ban="" đầu.="" các="" kết="" hợp="" thuộc="" tính="" tuyến="" tính="" thu="" được="" có="" thể="" được="" sử="" dụng="" để="" định="" hình="" các="" đặc="" tính="" sản="" phẩm="" cụ="" thể="" dựa="" trên="" các="" biến="" được="" nghiên="" cứu.="" tất="" cả="" các="" phân="" tích="" thống="" kê="" được="" thực="" hiện="" bằng="" ncss="" 2020="" statisticalsoftware="" (2020)="" (ncss,="" llc.,="" kaysville,="" ut,="">

chiết xuất cistanche chống lão hóa

4.Kết luận

Kết quả của thử nghiệm sàng lọc đầu tiên này cho thấy tiềm năng của ba người Icelandrong biểnbằng cách cung cấp các tác động có lợi hiệu quả thông qua một số con đường. Phương pháp khai thác xanh được phát triển bằng cách sử dụng điện trường xung trong nước cho kết quả tương tự như chiết xuất nước nóng truyền thống, cho thấy một số ưu điểm như bản chất không sinh nhiệt và thời gian khai thác ngắn hơn (10 phút so với 45 phút). Trong số ba loài tảo, tảo macroalgae A. esculenta màu nâu cho thấy hàm lượng TPC cao nhất và TFC cũng thể hiện nhiều nhấtchất chống oxy hóanăng lực Hơn nữa, các chất chiết xuất từ ​​nước của A. esculenta thể hiện các hoạt động ức chế betterin hơn P. palmaria và U. lactuca đối với collagenase, elastase, tyrosinasea và hyaluronidase là hứa hẹn nhấtrong biểncác loài có hoạt tính kháng enzym tuyệt vời để sử dụng trong việc làm trắng da,chống lão hóavà sức khỏe làn da. Thật thú vị, theA. Các chất chiết xuất từ ​​esculenta được tạo ra bằng phương pháp PEF cho thấy sự ức chế collagenase là 91%, cao hơn hoạt tính ức chế được thể hiện bằng cách chiết xuất bằng nước nóng truyền thống và cao hơn chất ức chế được cung cấp bởi bộ công cụ thương mại. Tóm lại, nghiên cứu sơ bộ của chúng tôi cho thấy rằng tiếng Icelandrong biển- chiết xuất dựa trên cơ sở, đặc biệt là chiết xuất từ ​​tảo nâu A. esculenta, được sản xuất bằng phương pháp chiết xuất hỗ trợ điện trường trong nước là các thành phần chức năng tiềm năng có thể được sử dụng làm hợp chất hoạt động cho các công thức mỹ phẩm và y học trong tương lai gần.

Người giới thiệu

1. Ariede, MB; Candido, TM; Jacome, ALM; Velasco, MVR; de Carvalho, JCM; Baby, AR Thuộc tính mỹ phẩm của tảo — Areview. Algal Res. 2017, 25, 483–487. [CrossRef]

2. Makkar, HPS; Trần, G.; Heuzé, V .; Giger-Reverdin, S.; Lessire, M.; Lebas, F.; Ankers, P. Tảo biển cho khẩu phần ăn của vật nuôi: Một đánh giá. Nguồn cấp dữ liệu Khoa học. Technol. 2016, 212, 1–17. [CrossRef]

3. O'Connor, J.; Meaney, S.; Williams, GA; Hayes, M. Tách chiết protein từ bốn loại tảo biển khác nhau bằng cách sử dụng ba chiến lược tiền xử lý vật lý khác nhau. Molecules 2020, 25, 2005. [CrossRef]

4. Máximo, P.; Ferreira, LM; Branco, P.; Lima, P.; Lourenço, A. Chất trao đổi chất thứ cấp và hoạt động sinh học của tảo Macroalgae xâm lấn Nam Âu. Ma túy tháng 3 2018, 16, 265. [CrossRef]

5. Barkia, tôi; Saari, N.; Manning, Vi tảo SR cho các sản phẩm giá trị cao hướng tới sức khỏe và dinh dưỡng cho con người. Thuốc tháng 3 2019,17, 304. [CrossRef]

6. Gomez-Zavaglia, A.; Prieto Lage, MA; Jimenez-Lopez, C.; Mejuto, JC; Simal-Gandara, J. Tiềm năng của tảo biển như một nguồn cung cấp các thành phần chức năng có giá trị tiền sinh học và chất chống oxy hóa. Chất chống oxy hóa 2019, 8, 406. [CrossRef] [PubMed]

7. Salehi, B.; Sharifi-Rad, J.; Seca, AML; Pinto, DCGA; Michalak, tôi; Trincone, A.; Mishra, AP; Nigam, M.; Zam, W .; Martins, N.Các xu hướng hiện nay về tảo biển: Xem xét thành phần hóa học, thực vật học và ứng dụng mỹ phẩm. Molecules2019, 24, 4182. [CrossRef]

8. Ghazali, E.; Sắp tới, PC; Đờm, DS; Nguyễn, B. Sức khỏe và mỹ phẩm: Điều tra giá trị của người tiêu dùng khi mua các sản phẩm chăm sóc cá nhân hữu cơ. J. Bán lẻ. Tiêu dùng. Serv. 2017, 39, 154–163. [CrossRef]

9. Amberg, N.; Fogarassy, ​​C. Hành vi của người tiêu dùng xanh trên thị trường mỹ phẩm. Tài nguyên 2019, 8, 137. [CrossRef]

10. Pereira, L. Tảo biển là nguồn cung cấp các chất hoạt tính sinh học và liệu pháp chăm sóc da — Dược mỹ phẩm, Algotheraphy và Thalassotherapy. Mỹ phẩm 2018, 5, 68. [CrossRef]

11. Martins, A.; Vieira, H.; Gaspar, H.; Santos, S. Các sản phẩm tự nhiên biển được tiếp thị trong ngành dược phẩm và mỹ phẩm: Mẹo để thành công. Ma túy tháng 3 năm 2014, ngày 12, 1066–1101. [CrossRef] [PubMed]

12. Agatonovic-Kustrin, S.; Morton, D. Cosmeceuticals có nguồn gốc từ các chất hoạt tính sinh học được tìm thấy trong tảo biển. Hải dương học 2013,1, 106.

13. Wang, H.-MD; Chen, C.-C.; Huỳnh, P.; Chang, J.-S. Khám phá tiềm năng sử dụng tảo trong mỹ phẩm. Nước sinh học. Technol. 2015,184, 355–362. [CrossRef]

14. Jahan, A.; Ahmad, KCN; Fatima, N.; Ansari, VA; Akhtar, J. Các hợp chất hoạt tính sinh học của tảo trong ngành thẩm mỹ: Một đánh giá.Phycologia 2017, 56, 410–422. [CrossRef]

15. Morone, J.; Alfeus, A.; Vasconcelos, V .; Martins, R. Tiết lộ tiềm năng của vi khuẩn lam trong mỹ phẩm và mỹ phẩm — Phương pháp tiếp cận hoạt tính sinh học mới. Algal Res. 2019, 41, 101541. [CrossRef]

16. Cikoš, A.-M.; Jerkovi´c, tôi .; Molnar, M.; Šubari´c, D.; Joki´c, S. Xu hướng mới cho các ứng dụng sản phẩm tự nhiên vĩ mô. Nat. Sản phẩm. 2019, 37, 1–12. [CrossRef]

17. Thring, TS; Hili, P.; Naughton, DP Hoạt động chống collagenase, chống elastase và chống oxy hóa của chiết xuất từ ​​21 loại thực vật. BMCComplement. Altern. Med. 2009, 9, 27. [CrossRef]

18. Jacobsen, C.; Sørensen, AM; Cố lên, SL; Akoh, CC; Hermund, Nguồn DB, Chiết xuất, Đặc tính và Ứng dụng của Chất chống oxy hóa Cấp độ từ Rong biển. Annu. Rev. Khoa học thực phẩm. Technol. 2019, 10, 541–568. [CrossRef]

19. Castejón, N. .; Señoráns, FJ Chiết xuất và phân đoạn đồng thời omega -3 acylglycerol và glycolipid từ sinh khối vi khuẩn ướt của Nannochloropsis gaditana bằng cách sử dụng chất lỏng có áp suất. Algal Res. 2019, 37, 74–82. [CrossRef]

20. Mohamed, MEA; Eissa, AHA Điện trường xung cho công nghệ chế biến thực phẩm. Kết cấu. Funct. Thực phẩm Eng. 2012, 11, 275–306.

21. Geada, P.; Rodrigues, R .; Loureiro, L.; Pereira, R .; Fernandes, B.; Teixeira, JA; Vasconcelos, V .; Vicente, AA Electrotechnologies đã ứng dụng vào công nghệ sinh học vi luật - Các ứng dụng, kỹ thuật và xu hướng trong tương lai. Thay mới. Duy trì. Energy Rev. 2018, 94, 656–668. [CrossRef]

22. Poojary, MM; Barba, FJ; Người ngoài hành tinh, B.; Donsì, F.; Pataro, G.; Dias, DA; Juliano, P. Các công nghệ thay thế tiên tiến loại bỏ các carotenoid từ vi tảo và rong biển. Mar. Drugs 2016, 14, 214. [CrossRef] [PubMed]

23. Vorobiev, E.; Lebovka, N. 2 — Chiết xuất từ ​​thực phẩm và vật liệu sinh học được tăng cường bằng năng lượng điện xung. Trong Công nghệ Chế biến Thực phẩm Sáng tạo; Knoerzer, K., Juliano, P., Smithers, G., Eds .; Nhà xuất bản Woodhead: Sawston, Vương quốc Anh, 2016; trang 31–56.

24. Käferböck, A. .; Smetana, S.; de Vos, R .; Schwarz, C.; Toepfl, S.; Parniakov, O. Chiết xuất bền vững các thành phần có giá trị từ tảo Spirulina được hỗ trợ bởi công nghệ điện trường xung. Algal Res. 2020, 48, 101914. [CrossRef]

25. Parniakov, O .; Barba, FJ; Grimi, N.; Marchal, L.; Jubeau, S.; Lebovka, N.; Vorobiev, E. Điện trường xung hỗ trợ chiết xuất các hợp chất có giá trị dinh dưỡng từ vi tảo Nannochloropsis spp. sử dụng hỗn hợp nhị phân của dung môi hữu cơ và nước. Innov. Khoa học thực phẩm. Khẩn cấp. Technol. 2015, 27, 79–85. [CrossRef]

26. Scherer, D.; Krust, D.; Frey, W .; Mueller, G .; Nick, P.; Gusbeth, C. Sự phục hồi protein được hỗ trợ bởi điện trường xung (PEF) từ ChlorellaVulgaris được thực hiện qua trung gian của một quá trình enzym sau khi tế bào chết. Algal Res. 2019, 41, 101536. [CrossRef]

27. Naseri, A.; Marinho, GS; Cố lên, SL; Bartela, JM; Jacobsen, C. Chiết xuất có sự hỗ trợ của enzyme và mô tả đặc tính của protein từ rong biển Palmaria palmitate. Algal Res. 2020, 47, 101849. [CrossRef]

đi qua

28. Robin, A.; Kazir, M. .; Bao, M.; Ixraen, A.; Frey, W .; Mueller, G .; Livney, YD; Golberg, A. Chất cô đặc protein chức năng được chiết xuất từ ​​Green Marine Macroalga Ulva sp., Bằng điện trường xung cao áp và máy ép cơ học. ACS Duy trì. Chèm. Eng.2018, 6, 13696–13705. [CrossRef]

29. Einarsdóttir, R .; Þórarinsdóttir, KA; Aðalbjörnsson, BV; Guðmundsson, M. .; Marteinsdóttir, G .; Kristbergsson, K. Ảnh hưởng của các thông số xử lý hỗ trợ điện trường đối với quá trình chiết xuất nước thô của Laminaria digitata. J. Appl. Phycol. Năm 2021, 33,3287–3296. [CrossRef]

30. Hậu kỳ, PR; Cerezo-Chinarro, O.; Akkerman, RJ; Olivieri, G.; Wijffels, RH; Brandenburg, WA; Eppink, MHM Biorefinery of the macroalgae Ulva Lactuca: Chiết xuất protein và carbohydrate bằng cách phân hủy nhẹ. J. Appl. Phycol. 2018, 30, 1281–1293. [CrossRef]

31. Zbinden, MDA; Sturm, BSM; Nord, RD; Cẩn thận, WJ; Moore, D .; Shinogle, H.; Stagg-Williams, SM Điện trường xung (PEF) như một tiền xử lý tăng cường để chiết xuất lipid dung môi xanh hơn từ vi tảo. Công nghệ sinh học. Bioeng. 2013, 110, 1605–1615. [CrossRef]

32. Silve, A.; Papachristou, tôi; Wüstner, R .; Sträßner, R .; Schirmer, M.; Leber, K .; Guo, B.; Interrante, L.; Posten, C.; Frey, W. Khai thác lipid từ các protothecoides của vi nấm Auxenochlorella ướt sử dụng xử lý điện trường xung và hỗn hợp etanol-hexan. AlgalRes. 2018, 29, 212–222. [CrossRef]

33. Chittapun, S.; Jonjaroen, V .; Khumrangsee, K .; Chiết xuất Charoenrat, T. C-phycocyanin từ hai vi khuẩn lam nước ngọt bằng kỹ thuật đông lạnh-tan băng và điện trường xung để cải thiện hiệu quả chiết xuất và độ tinh khiết. Algal Res. 2020, 46, 101789. [CrossRef]

34. Aryee, ANA; Agyei, D.; Akanbi, TO Phục hồi và sử dụng sắc tố rong biển trong chế biến thực phẩm. Curr. Opin. Khoa học thực phẩm.2018, 19, 113–119. [CrossRef]

35. Nowacka, M.; Tappi, S.; Wiktor, A.; Rybak, K .; Miszczykowska, A.; Czyzewski, J .; Drozdzal, K .; Witrowa-Rajchert, D.; Tylewicz, U. Tác động của điện trường xung đối với việc chiết xuất các hợp chất hoạt tính sinh học từ củ cải đường. Thực phẩm 2019, 8, 244. [CrossRef]

36. Martínez, JM; Delso, C.; Álvarez, tôi; Raso, J. Rev. Khoa học thực phẩm. Két thức ăn. 2020, 19, 530–552. [CrossRef]

37. Pataro, G.; Goettel, M.; Straessner, R .; Gusbeth, C.; Ferrari, G.; Frey, W. Ảnh hưởng của việc xử lý PEF đối với việc chiết xuất các hợp chất có giá trị từ vi tảo C. vulgaris. Chèm. Anh Dịch. 2017, 57, 67–72.

38. Brunton, NP; Luengo, E. Điện trường xung để chiết xuất các chất chuyển hóa thứ cấp từ thực vật. Trong trường điện xung để tách các chất chuyển hóa thứ cấp từ thực vật; Miklavcic, D., Ed .; Springer International Publishing: Cham, Thụy Sĩ, 2017; pp. 1–15.

39. Schiener, P.; Đen, KD; Stanley, MS; Màu xanh lá cây, DH Sự thay đổi theo mùa trong thành phần hóa học của các loài tảo bẹLaminaria digitata, Laminaria hyperborea, Saccharina latissima và Alaria esculenta. J. Appl. Phycol. 2015, 27, 363–373. [CrossRef]

40. Salgado, LT; Tomazetto, R .; Cinelli, LP; Farina, M.; Filho, GMA Ảnh hưởng của tảo nâu alginat lên các hợp chất phenolic khả năng hấp thụ bức xạ tia cực tím in vitro. Braz. J. Hải dương. 2007, 55, 145–154. [CrossRef]

41. Orfanoudaki, M.; Hartmann, A. .; Karsten, U .; Ganzera, M. Cấu hình hóa học của các axit amin giống mycosporine ở các loài tảo hai mươi bậc. J. Phycol. 2019, 55, 393–403. [CrossRef]

42. Pangestuti, R.; Siahaan, EA; Kim, S.-K. Các chất bảo vệ có nguồn gốc từ tảo biển. Mar. Drugs 2018, 16, 399. [CrossRef] [PubMed]

43. Schneider, G.; Figueroa, FL; Vega, J .; Chaves, P.; Álvarez-Gómez, F .; Korbee, N. .; Bonomi-Barufi, J. Đặc tính bảo vệ photoprotection của các sinh vật quang hợp ở biển được trồng ở các khu vực tiếp xúc với tia cực tím cao: Các ứng dụng mỹ thuật. Algal Res. 2020,49, 101956. [CrossRef]

44. Nishida, Y .; Kumagai, Y. Michiba, S .; Yasui, H.; Kishimura, H. Khả năng chiết xuất và chống oxy hóa hiệu quả của các axit amin giống Mycosporine từ Red Alga Dulse Palmaria palmitate ở Nhật Bản. Thuốc tháng 3 năm 2020, 18, 502. [CrossRef] [PubMed]

45. Rehm, E.; Dalgleish, F.; Rất tiếc, M.; Matteoli, S.; Archambault, P.; Lambert Girard, S. .; Piché, M.; Lagunas-Morales, J. So sánh kỹ thuật LiDAR hấp thụ huỳnh quang và hấp thụ vi phân để phát hiện sinh khối tảo với các ứng dụng cho chất nền Bắc Cực. Cảm biến và Giám sát InOcean X; Hiệp hội Quang học và Quang tử Quốc tế: Bellingham, WA, Hoa Kỳ, 2018; Tập 10631, tr. 106310Z.

46. ​​Vương, T.; Jonsdottir, R .; Ólafsdóttir, G. Tổng số các hợp chất phenolic, loại bỏ gốc và loại bỏ kim loại của các chất chiết xuất từ ​​tảo biển Iceland. Chem chép thực phẩm. 2009, 116, 240–248. [CrossRef]

47. Bedoux, G.; Hardouin, K .; Burlot, AS; Bourgougnon, N. Chương 12 — Các thành phần hoạt tính sinh học từ tảo biển: Ứng dụng mỹ phẩm và phát triển trong tương lai. Trong những tiến bộ trong nghiên cứu thực vật; Bourgougnon, N., Ed .; Nhà xuất bản: Cambridge, MA, USA, 2014; Tập 71, trang 345–378.

48. Roleda, CỦA TÔI; Marfaing, H.; Desnica, N. .; Jónsdóttir, R .; Skjermo, J .; Rebours, C.; Nitschke, U. Các biến thể về hàm lượng polyphenol và kim loại gợn sóng trong sinh khối số lượng lớn rong biển thu hoạch tự nhiên và nuôi trồng: Đánh giá rủi ro sức khỏe và hàm ý đối với các ứng dụng thực phẩm. Kiểm soát thực phẩm 2019, 95, 121–134. [CrossRef]

49. Ummat, V.; Tiwari, BK; Jaiswal, AK; Condon, K .; Garcia-Vaquero, M.; O'Doherty, J .; O'Donnell, C.; Rajauria, G. Tối ưu hóa tần số siêu âm, thời gian chiết xuất và dung môi để thu hồi polyphenol, Phlorotannin và hoạt tính chống oxy hóa liên quan từ tảo biển nâu. Thuốc tháng 3 năm 2020, 18, 250. [CrossRef]

50. Afonso, C.; Matos, J.; Guarda, tôi; Gomes-Bispo, A.; Gomes, R .; Cardoso, C.; Gueifão, S.; Delgado, tôi; Coelho, tôi; Castanheira, tôi; et al. Tiềm năng hoạt tính và dinh dưỡng của Alaria esculenta và Saccharina latissima. J. Appl. Phycol. 2021, 33, 501–513. [CrossRef]

51. Cotas, J.; Leandro, A. .; Monteiro, P.; Pacheco, D.; Figueirinha, A.; Gonçalves, AMM; da Silva, GJ; Pereira, L. Phenolics rong biển: Từ chiết xuất đến ứng dụng. Thuốc tháng 3 năm 2020, 18, 384. [CrossRef]

52. Farasat, M.; Khavari-Nejad, RA; Nabavi, SM; Namjooyan, F. Hoạt động chống oxy hóa, Tổng số Phenolic và Hàm lượng Flavonoid của một số loại tảo biển xanh có thể ăn được từ Bắc đảo của Vịnh Ba Tư. IJPR 2014, 13, 163–170. [PubMed]

53. Manivannan, K .; Thirumaran, G .; Devi, GK; Anantharaman, P.; Balasubramanian, T. Thành phần gần đúng của các nhóm tảo biển khác nhau từ Vùng nước ven biển Vedalai (Vịnh Mannar): Bờ biển Đông Nam của Ấn Độ. Trung Đông J. Sci. Res. 2009, 4, 72–77.

54. Mišurcová, L .; Škrovánková, S. .; Samek, D.; Ambrožová, J. .; Mach ˚u, L. Chương 3 — Lợi ích sức khỏe của Polysaccharides tảo trong Dinh dưỡng Con người. Trong những Tiến bộ trong Nghiên cứu Thực phẩm và Dinh dưỡng; Henry, J., Ed .; Nhà xuất bản: Cambridge, MA, USA, 2012; Tập 66, trang 75–145.

55. Lafarga, T.; Acién-Fernández, FG; Garcia-Vaquero, M. Các peptit và cacbohydrat hoạt tính sinh học từ rong biển cho các ứng dụng thực phẩm: Sự xuất hiện tự nhiên, phân lập, tinh chế và xác định. Algal Res. 2020, 48, 101909. [CrossRef]

56. Mutripah, S.; Meinita, MDN; Kang, J.-Y .; Jeong, G.-T.; Susanto, AB; Prabowo, RE; Hong, Y.-K. Sản xuất cồn sinh học từ quá trình thủy phân của Palmaria palmata bằng cách sử dụng axit sulfuric và lên men bằng men bia. J. Appl. Phycol. 2014, 26, 687–693. [CrossRef]

57. Dominguez, H.; Loret, EP Ulva lactuca, Nguồn gốc của rắc rối và tiềm năng giàu có. Thuốc tháng 3 năm 2019, 17, 357. [CrossRef]

58. Kidgell, JT; Magnusson, M.; de Nys, R .; Glasson, CRK Ulvan: Một đánh giá có hệ thống về chiết xuất, thành phần và chức năng. 2019, 39, 101422. [CrossRef]

59. Habeebullah, SFK; Alagarsamy, S.; Arnous, A.; Jacobsen, C. Chiết xuất bằng enzym của các thành phần chống oxy hóa từ cây tảo biển Đan Mạch và mô tả các nguyên tắc hoạt động. Algal Res. 2021, 56, 102292. [CrossRef]

60. Nhân dân tệ, Y. Zhang, J .; Quạt, J.; Clark, J .; Shen, P.; Li, Y. Zhang, C. Chiết xuất với sự hỗ trợ của vi sóng các hợp chất phenolic từ bốn loài tảo nâu kinh tế và đánh giá các hoạt động chống oxy hóa và tác dụng ức chế của chúng đối với -amylase, -glucosidase, lipase tuyến tụy và tyrosinase. Int. Thực phẩm Res. J. 2018, 113, 288–297. [CrossRef]

61. Balboa, EM; Conde, E.; Moure, A. .; Falqué, E.; Domínguez, H. Đặc tính chống oxy hóa in vitro của các chất chiết xuất thô và các hợp chất từ ​​tảo nâu. Chem chép thực phẩm. 2013, 138, 1764–1785. [CrossRef]

62. Kainama, H.; Fatmawati, S.; Santoso, M.; Đu đủ, PM; Ersam, T. Mối quan hệ của việc nhặt rác triệt để tự do và tổng hàm lượng phenolic và Flavonoid của Garcinia lasoar PAM. Dược phẩm. Chèm. J. 2020, 53, 1151–1157. [CrossRef]

63. Dang, TT; Văn Vương, Q.; Schreider, MJ; Bowyer, MC; Van Altena, IA; Scarlett, CJ Tối ưu hóa các điều kiện phân tách bằng sóng siêu âm đối với hàm lượng phenol và các hoạt động chống oxy hóa của các ngân hàng Hormosira tảoii sử dụng phương pháp đo bề mặt phản ứng. J. Appl. Phycol. 2017, 29, 3161–3173. [CrossRef]

64. Couteau, C.; Coiffard, L. Chương 14 — Ứng dụng của rong biển trong mỹ phẩm. Trong rong biển trong sức khỏe và phòng chống bệnh tật; Fleurence, J., Levine, I., Eds .; Nhà xuất bản Học thuật: San Diego, CA, Hoa Kỳ, 2016; trang 423–441.

65. Tsukahara, K .; Takema, Y .; Moriwaki, S.; Tsuji, N. .; Suzuki, Y .; Fujimura, T.; Imokawa, G. Ức chế có chọn lọc nguyên bào sợi của da Elastase tạo ra sự ngăn ngừa sự hình thành nếp nhăn do tia cực tím B. phụ thuộc vào nồng độ. J. Điều tra. Dermatol. 2001,117, 671–677. [CrossRef]

66. Liyanaarachchi, GD; Samarasekera, JKRR; Mahanama, KRR; Hemalal, KDP Tyrosinase, elastase, hyaluronidase, hoạt động ức chế và chống oxy hóa của cây thuốc Sri Lanka cho các loại mỹ phẩm mới. Ind. Sản phẩm cây trồng. 2018, 111, 597–605. [CrossRef]

67. Gupta, PL; Rajput, M.; Oza, T.; Trivedi, U .; Sanghvi, G. Sự nổi tiếng của các sản phẩm vi sinh vật trong ngành công nghiệp mỹ phẩm. Nat. Sản phẩm. 2019, 9, 267–278. [CrossRef] [PubMed]

68. Zolghadri, S.; Bahrami, A.; Hassan Khan, MT; Munoz-Munoz, J.; Garcia-Molina, F.; Garcia-Canovas, F.; Saboury, AA Đánh giá toàn diện về các chất ức chế tyrosinase. J. Enzyme ức chế. Med. 2019, 34, 279–309. [CrossRef]

69. Couteau, C.; Coiffard, L. Phycocosmetics và Mỹ phẩm biển khác, Mỹ phẩm cụ thể được bào chế bằng cách sử dụng tài nguyên biển. Thuốc 2020, 18, 322. [CrossRef]

70. Sari, DM; Anwar, E.; Arifianti, AE Các hoạt động chống oxy hóa và ức chế tyrosinase của chiết xuất ethanol từ rong nâu (Turbinaria conoides) như một thành phần làm sáng da. Dược phẩm. J. 2019, 11, 379–382. [CrossRef]

71. Brenner, M.; Thính giác, VJ Vai trò bảo vệ của melanin chống lại tác hại của tia UV trên da người. Quang hóa. Photobiol. 2008, 84,539–549. [CrossRef] [PubMed]

72. Lee, SY; Baek, N.; Nam, T.-G. Thuốc ức chế tyrosinase tự nhiên, bán tổng hợp và tổng hợp. J. Enzyme ức chế. Med. Chèm. 2016, 31,1–13. [CrossRef] [PubMed]

73. Ferreres, F.; Lopes, G.; Gil-Izquierdo, A. .; Andrade, PB; Sousa, C.; Mouga, T.; Valentão, P. Phlorotannin Chiết xuất từ ​​Fucales Được đặc trưng bởi HPLC-DAD-ESI-MSn: Phương pháp tiếp cận khả năng ức chế Hyaluronidase và các đặc tính chống oxy hóa. Tháng 3 năm 2012, 10, 2766–2781. [CrossRef] [PubMed]

74. Fayad, S.; Nehmé, R .; Tannoury, M.; Nhẹ nhàng hơn, E.; Pichon, C.; Chất chiết xuất từ ​​nước Morin, P. Macroalga Padina pavonica thu được bằng cách chiết chất lỏng có áp suất và chiết xuất có hỗ trợ vi sóng ức chế hoạt động của hyaluronidase như được thể hiện bằng điện di mao quản. Sắc ký đồ. A 2017, 1497, 19–27. [CrossRef] [PubMed]

75. Athukorala, Y. Kim, K.-N.; Jeon, Y.-J. Đặc tính chống tăng sinh và chống oxy hóa của enzym thủy phân từ tảo nâu, Ecklonia cava. Chem chép thực phẩm. Toxicol. 2006, 44, 1065–1074. [CrossRef]

76. Jiménez-Escrig, A. .; Gómez-Ordóñez, E.; Rupérez, P. nâu và tảo biển đỏ là nguồn cung cấp dinh dưỡng chống oxy hóa tiềm năng. Appl. Phycol. 2012, 24, 1123–1132. [CrossRef]

77. Karawita, R .; Siriwardhana, N. .; Lee, K.-W .; Heo, M.-S.; Yeo, I.-K .; Lee, Y.-D. .; Jeon, Y.-J. Các loại oxy phản ứng nhặt rác, lọc kim loại, giảm công suất và tính chất ức chế peroxy hóa lipid của các phân đoạn dung môi khác nhau từ Hizikia fusiformis.Eur. Thực phẩm Res. Technol. 2005, 220, 363–371. [CrossRef]

78. Jormalainen, V .; Honkanen, T. Sự biến đổi trong chọn lọc tự nhiên để tăng trưởng và phlorotannin trong tảo nâu Fucus vesiculosus.J. Evolut. Biol. 2004, 17, 807–820. [CrossRef] [PubMed]

79. Koivikko, R .; Loponen, J.; Pihlaja, K .; Jormalainen, V. Phân tích sắc ký lỏng hiệu năng cao của phlorotannin từ tảo nâu Fucus vesiculosus. Phytochem. Hậu môn. 2007, 18, 326–332. [CrossRef] [PubMed]

80. Mareˇcek, V .; Mikyška, A. .; Hampel, D.; Cejka, P.; Neuwirthov ˇ á, J .; Malachová, A. .; Phương pháp Cerkal, R. ABTS và DPPH như một công cụ để nghiên cứu khả năng chống oxy hóa của lúa mạch và mạch nha mùa xuân. J. Khoa học ngũ cốc. 2017, 73, 40–45. [CrossRef]

81. Asada, M.; Sugie, M.; Inoue, M.; Nakagomi, K .; Hongo, S.; Murata, K .; Irie, S.; Takeuchi, T.; Tomizuka, N. .; Oka, S. Hiệu ứng ức chế của axit Alginic trên Hyaluronidase và giải phóng Histamine từ Tế bào Mast. Biosci. Công nghệ sinh học. Hóa sinh. 1997, 61, 1030–1032. [CrossRef] [PubMed]

82. Mase, T.; Yamauchi, M.; Kato, Y .; Esaki, H.; Isshiki, S. Hyaluronidase-Ức chế Polysaccharide có tính axit được phân lập từ PorphyridiumPurpureum. Tuyển tập các bài luận nghiên cứu tại Đại học Suishan Women's Gakuen. Nat. Khoa học. 2013, 44, 105–113,83. Tolpeznikaite, E.; Bartkevics, V; Ruzauskas, M.; Pilkaityte, R .; Viskelis, P.; Urbonaviciene, D.; Zavistanaviciute, P.; Zokaityte, E.; Ruibys, R.; Bartkiene, E. Đặc tính của chiết xuất Macro và vi tảo Các hợp chất có hoạt tính sinh học và các nguyên tố vi lượng và vĩ mô Chuyển từ tảo sang chiết xuất. Thực phẩm 2021, 10, 2226. [CrossRef]

84. Gómez, tôi; Huovinen, P. Các mô hình chức năng hình thái và sự phân vùng của tảo biển Nam Chile: Tầm quan trọng của các đặc điểm quang hợp và quang sinh học. Tháng 3 Ecol. Ăn xin. Người phục vụ. 2011, 422, 77–91. [CrossRef]

85. Karsten, U .; Các yếu tố Wiencke, C. Kiểm soát sự hình thành các axit amin giống Mycosporine hấp thụ tia cực tím trong tảo biển Alga Palmaria palmitate từ Spitsbergen (Na Uy). J. Thực vật. Physiol. 1999, 155, 407–415. [CrossRef]

86. Rất tiếc, V .; Sivagnanam, SP; Rajauria, G.; O'Donnell, C.; Tiwari, BK Những tiến bộ trong kỹ thuật tiền xử lý và công nghệ ngoại bào xanh cho hoạt tính sinh học từ rong biển. Xu hướng Thực phẩm Khoa học. Technol 2021, 110, 90–106. [CrossRef]

87. Boussetta, N.; Lanoisellé, J.-L.; Bedel-Cloutour, C.; Vorobiev, E. Tách chất hòa tan từ bã nho bằng phóng điện điện áp cao để thu hồi polyphenol: Ảnh hưởng của lưu huỳnh đioxit và xử lý nhiệt. J. Thực phẩm Eng. 2009, 95, 192–198. [CrossRef]

88. Goettel, M.; Eing, C.; Gusbeth, C.; Straessner, R .; Frey, W. Điện trường xung hỗ trợ khai thác các chất có giá trị nội bào từ tảo vi sinh. Algal Res. 2013, 2, 401–408. [CrossRef]

89. Hwang, P.-A. .; Wu, C.-H.; Gau, S.-Y .; Chien, S.-Y .; Hwang, D.-F. Các hoạt động chống oxy hóa và kích thích miễn dịch của nước nóng chiết xuất từ ​​rong biển Sargassum epiphyllum. Khoa học viễn tưởng của J. Mar. Technol. 2010, 18, 41–46. [CrossRef]

90. Sabeena Farvin, KH; Jacobsen, C. Các hợp chất phenolic và các hoạt động chống oxy hóa của các loài tảo biển được chọn lọc từ Đan Mạch. Chem chép thực phẩm. 2013, 138, 1670–1681. [CrossRef] [PubMed]

91. Godlewska, K .; Michalak, tôi; Tuhy, L.; Chojnacka, K. Chất kích thích sinh học tăng trưởng thực vật dựa trên các phương pháp khác nhau của rong biển kết hợp với nước. BioMed Res. Int. 2016, 2016, 1–11. [CrossRef] [PubMed]

92. Zhang, Q.; Zhang, J .; Shen, J .; Silva, A. .; Dennis, DA; Barrow, CJ Một 96- Phương pháp Microplate Đơn giản để Ước tính Hàm lượng TotalPolyphenol trong Tảo biển. J. Appl. Phycol. 2006, 18, 445–450. [CrossRef]

93. Kamtekar, S.; Keer, V .; Patil, V. Ước tính hàm lượng phenolic, hàm lượng flavonoid, chất chống oxy hóa và hoạt tính ức chế alpha-amylase của công thức polyherbal được bán trên thị trường. J. Appl. Dược phẩm. Khoa học. 2014, 4, 61.

94. Neto, R .; Marçal, C.; Queiros, A.; Abreu, M.; Silva, A. .; Cardoso, S. Sàng lọc các loại Ulva Harda, Gracilaria sp., Fucus vesiculosus vàSaccharina latissima làm Thành phần Chức năng. Int. J. Mol. Khoa học. 2018, 19, 2987. [CrossRef]

95. Benzie, NẾU; Strain, JJ Khả năng khử sắt của huyết tương (FRAP) như một thước đo "khả năng chống oxy hóa": Xét nghiệm FRAP. Hậu môn.Biochem. 1996, 239, 70–76. [CrossRef]

96. Eun Lee, K .; Bharadwaj, S.; Yadava, U .; Gu Kang, S. Đánh giá caffeine như một chất ức chế chống lại collagenase, elastase và tyrosinaseusing trong phương pháp tiếp cận silico và in vitro. J. Enzyme ức chế. Med. Chèm. 2019, 34, 927–936. [CrossRef] [PubMed]